YeaGreen核酸染料 10000×核酸染料水溶液|YeaGreen Nucleic Acid Gel Stain(10,000×in Water)
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COA
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产品描述
YeaGreen是一种独特的油性大分子，不能穿透细胞膜进入细胞内，不易挥发升华，人体不会吸入。艾姆斯氏测试结果也表明YeaGreen在凝胶染色浓度下完全没有诱变性，因此相对于EB的强致癌性是一种安全无毒的核酸染料。适用于各种大小片段核酸的电泳染色，对核酸迁移率的影响远小于SYBR Green I。适用于使用微波或其它加热方法制备琼脂糖凝胶，室温下在酸或者碱性缓冲液中极其稳定，耐光性强。
YeaGreen适用于琼脂糖和聚丙烯酰胺凝胶电泳中的dsDNA、ssDNA以及RNA染色，可选择胶染法或泡染法进行染色，使用非常方便灵活。同SYBR Green I的光谱性质，适用于使用471 nm激发的紫外凝胶成像透射仪或可见光凝胶透射仪观察。
运输和保存方法
常温运输，避光保存，有效期一年。
使用方法
一、胶染法（同EB，电泳前染色）
1. 制胶时加入YeaGreen核酸染料（每50 mL琼脂糖溶液中加入5 μL YeaGreen 10,000×水溶液，以此类推）。
2. 按照常规方法进行电泳。
【注】：1. 此方法比较节省染料，500 μL染料大约可以做100块50 mL的胶。
2. 由于YeaGreen 具有良好的热稳定性，可以直接添加到热的琼脂糖溶液中而不需要等待溶液冷却。摇晃，振荡或者翻转以保证染料充分混匀。
3. YeaGreen兼容所有常用的电泳缓冲溶液。
4. 如果总是看到条带弥散或分离不理想，建议使用泡染法染色以确认问题是否与染料有关。如果染色后问题依旧存在，则说明问题与染料无关，请尝试：降低琼脂糖浓度；选用更长的凝胶；延长凝胶时间以保证边缘清晰；改进上样技巧或选择泡染法染色。
5. 胶染法不适合预制聚丙烯酰胺凝胶，对于聚丙烯酰胺凝胶请使用泡染法。
二、泡染法（电泳后染色）
1．按照常规方法进行电泳。
2．用H2O将YeaGreen 10,000×水溶液稀释约3,300倍到0.1 M NaCl中，制成3× 染色液。（如将15 μL YeaGreen 10,000×水溶液和5 mL 1 M NaCl加到45 mL H2O中）。
3．将凝胶小心地放入合适的容器中，缓慢加入足量的3×染色液浸没凝胶。室温振荡染色30 min左右，最佳染色时间根据凝胶厚度以及琼脂糖浓度不同而略有不同。对于含3.5～10%聚丙烯酰胺的凝胶，染色时间通常介于30 min到1 h，并随聚丙烯酰胺含量增加而延长。
【注】：1. 用泡染法染色时，染料用量较多。单次使用的染色液可重复使用3次左右。
2. 3×YeaGreen染色液可以大量制备，在室温下避光保存直至用完。
注意事项
1. 关于核酸染料相关产品的选择：
如果您使用紫外成像仪，建议选择YeaRed（Cat#10202）-EB核酸染料的无毒替代品，具有同EB相同的光谱特性；如果您使用激光成像仪或希望在可见光下观测，请选择YeaGreen，在凝胶染色中是SYBR Green I的完美替代品，安全无毒。
YeaGreen虽然具SYBR Green I 相似的光谱特性，且在凝胶染色方面效果优于SYBR Green I，但不建议用于qPCR。建议使用专为此用途设计的SUPER Green I（Cat#10206）和RTGreen（Cat#10207）。
2. 少数情况下，质粒经某些酶切后的DNA样品会出现拖尾和分辨率降低的问题，此时建议同时尝试两种染色方法以决定哪种方法更适合。
3. 为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。
4. 本产品仅作科研用途！
HB220426
产品描述
YeaGreen是一种独特的油性大分子，不能穿透细胞膜进入细胞内，不易挥发升华，人体不会吸入。艾姆斯氏测试结果也表明YeaGreen在凝胶染色浓度下完全没有诱变性，因此相对于EB的强致癌性是一种安全无毒的核酸染料。适用于各种大小片段核酸的电泳染色，对核酸迁移率的影响远小于SYBR Green I。适用于使用微波或其它加热方法制备琼脂糖凝胶，室温下在酸或者碱性缓冲液中极其稳定，耐光性强。
YeaGreen适用于琼脂糖和聚丙烯酰胺凝胶电泳中的dsDNA、ssDNA以及RNA染色，可选择胶染法或泡染法进行染色，使用非常方便灵活。同SYBR Green I的光谱性质，适用于使用471 nm激发的紫外凝胶成像透射仪或可见光凝胶透射仪观察。
运输和保存方法
常温运输，避光保存，有效期一年。
使用方法
一、胶染法（同EB，电泳前染色）
1. 制胶时加入YeaGreen核酸染料（每50 mL琼脂糖溶液中加入5 μL YeaGreen 10,000×水溶液，以此类推）。
2. 按照常规方法进行电泳。
【注】：1. 此方法比较节省染料，500 μL染料大约可以做100块50 mL的胶。
2. 由于YeaGreen 具有良好的热稳定性，可以直接添加到热的琼脂糖溶液中而不需要等待溶液冷却。摇晃，振荡或者翻转以保证染料充分混匀。
3. YeaGreen兼容所有常用的电泳缓冲溶液。
4. 如果总是看到条带弥散或分离不理想，建议使用泡染法染色以确认问题是否与染料有关。如果染色后问题依旧存在，则说明问题与染料无关，请尝试：降低琼脂糖浓度；选用更长的凝胶；延长凝胶时间以保证边缘清晰；改进上样技巧或选择泡染法染色。
5. 胶染法不适合预制聚丙烯酰胺凝胶，对于聚丙烯酰胺凝胶请使用泡染法。
二、泡染法（电泳后染色）
1．按照常规方法进行电泳。
2．用H2O将YeaGreen 10,000×水溶液稀释约3,300倍到0.1 M NaCl中，制成3× 染色液。（如将15 μL YeaGreen 10,000×水溶液和5 mL 1 M NaCl加到45 mL H2O中）。
3．将凝胶小心地放入合适的容器中，缓慢加入足量的3×染色液浸没凝胶。室温振荡染色30 min左右，最佳染色时间根据凝胶厚度以及琼脂糖浓度不同而略有不同。对于含3.5～10%聚丙烯酰胺的凝胶，染色时间通常介于30 min到1 h，并随聚丙烯酰胺含量增加而延长。
【注】：1. 用泡染法染色时，染料用量较多。单次使用的染色液可重复使用3次左右。
2. 3×YeaGreen染色液可以大量制备，在室温下避光保存直至用完。
注意事项
1. 关于核酸染料相关产品的选择：
如果您使用紫外成像仪，建议选择YeaRed（Cat#10202）-EB核酸染料的无毒替代品，具有同EB相同的光谱特性；如果您使用激光成像仪或希望在可见光下观测，请选择YeaGreen，在凝胶染色中是SYBR Green I的完美替代品，安全无毒。
YeaGreen虽然具SYBR Green I 相似的光谱特性，且在凝胶染色方面效果优于SYBR Green I，但不建议用于qPCR。建议使用专为此用途设计的SUPER Green I（Cat#10206）和RTGreen（Cat#10207）。
2. 少数情况下，质粒经某些酶切后的DNA样品会出现拖尾和分辨率降低的问题，此时建议同时尝试两种染色方法以决定哪种方法更适合。
3. 为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。
4. 本产品仅作科研用途！
HB220426
Q：核酸染料选择指南
A：
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|
YeaRed |
YeaGreen |
EB |
Goldview |
|
激发波长 |
304 nm |
471 nm |
302 nm |
254 nm |
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安全性 |
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适用仪器 |
紫外成像仪 |
激光成像仪或可 见光成像 |
紫外成像仪 |
紫外成像仪或可 见光成像 |
[1] Azam MS, Yu D, Liu N, Wu A. Degrading Ochratoxin A and Zearalenone Mycotoxins Using a Multifunctional Recombinant Enzyme. Toxins (Basel). 2019;11(5):301. Published 2019 May 27. doi:10.3390/toxins11050301(IF:3.895)
[2] Gao X, Liang K, Mei S, Peng S, Vong EG, Zhan J. An efficient system to generate truncated human angiotensin converting enzyme 2 (hACE2) capable of binding RBD and spike protein of SARS-CoV2. Protein Expr Purif. 2021;184:105889. doi:10.1016/j.pep.2021.105889(IF:1.650)