Vero宿主细胞DNA残留检测试剂盒是用于定量分析检测各种生物制品的中间品、半成品和成品中的Vero残留DNA含量的试剂盒。
本试剂盒采用探针法荧光定量PCR原理,可专一快速的检测Vero细胞的残留DNA,其最低检测限可以达到fg水平。该试剂盒可与本公司的磁珠法残留DNA样本前处理试剂盒(Cat#18461ES/18462ES)配套使用。
组分信息
组分编号
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组分名称
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41307ES50
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41307ES60
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41307-A
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Vero qPCR Mix
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0.75 mL
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1.5 mL
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41307-B
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Vero Primer&Probe Mix
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200 μL
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400 μL
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41307-C
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DNA Dilution Buffer
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1.8 mL×2管
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1.8 mL×4管
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41307-D
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Vero DNA Control(30 ng/μL)
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25 μL
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50 μL
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41307-E
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IC*
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50 μL
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100 μL
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*IC:Internal control,内部对照
储存条件
1. 所有组分均干冰运输,-25~-15℃保存,有效期2年。其中,41307-A和41307-B均需避光保存。
2. 收到货后,请检查共5个组分是否齐全,并立即放入对应的保存温度中储存。
注意事项
1. 本产品仅作科研用途。
2. 为了您的安全和健康,请穿实验服并佩戴一次性手套操作。
3. 使用本试剂前请仔细阅读说明书,实验应规范操作,包括样本处理、反应体系的配制及加样。
4. 每个组分在使用前都应充分震荡混匀,低速离心。
适用机型
包含但不限于以下仪器:
Thermo Scientific:ABI 7500,ABI Quant Studio 5,ABI Step OnePlus;
Bio-Rad:CFX96 Optic Module;
上海宏石医疗科技:SLAN-96S。
使用说明
1. Vero DNA Control定量参考品的稀释和标准曲线的制备
用试剂盒中提供的DNA Dilution Buffer(DNA稀释液)将Vero DNA Control定量参考品进行梯度稀释*,稀释浓度依次为3 ng/μL,300 pg/μL,30 pg/μL,3 pg/μL,300 fg/μL,30 fg/μL,3 fg/μL。
具体操作如下:
1)将试剂盒中的Vero DNA Control定量参考品和DNA Dilution Buffer置于冰上融化,待完全融化后,轻微振荡混匀,低速离心10 sec。
2)取7支洁净的1.5 mL离心管,分别标记为Std0,Std1,Std2,Std3,Std4,Std5,Std6。
3)在标记为Std0的1.5 mL离心管中加90 μL DNA Dilution Buffer和10 μL Vero DNA Control定量参考品,Std0即稀释为3 ng/μL的浓度,振荡混匀后低速离心10 sec,该浓度可分装置于–20℃短期保存(不超过3个月)**,使用时避免反复冻融。
4)在Std1,Std2,Std3,Std4,Std5,Std6离心管中先分别加入90 μL DNA Dilution Buffer***,再进行梯度稀释****,具体稀释方法如下:
稀释管
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稀释比例
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终浓度
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Std1
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10 μL Std0 + 90 μL DNA Dilution Buffer
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300 pg/μL
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Std2
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10 μL Std1 + 90 μL DNA Dilution Buffer
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30 pg/μL
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Std3
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10 μL Std2 + 90 μL DNA Dilution Buffer
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3 pg/μL
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Std4
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10 μL Std3 + 90 μL DNA Dilution Buffer
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300 fg/μL
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Std5
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10 μL Std4 + 90 μL DNA Dilution Buffer
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30 fg/μL
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Std6
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10 μL Std5 + 90 μL DNA Dilution Buffer
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3 fg/μL
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表1 标准品梯度稀释
*每个浓度做3个复孔,该试剂可测试300 pg/μL~3 fg/μL线性范围。若需要,可适当扩大或缩小线性范围。
**为减少反复冻融次数和避免污染,建议初次使用时将DNA定量参考品分装储存于-20℃。
***已融化未使用的DNA稀释液可保存于2-8℃ 7天,若长时间不用,请放置于-20℃。
****为确保模板完全混匀,每个梯度稀释时需轻微震荡混匀约1 min。
2. 样本加标回收质控ERC的制备
根据需要设置ERC中的Vero DNA标准品浓度(以制备加30 pg Vero DNA量的ERC为例),具体操作如下:
1)取100 μL待测样本加入1.5 mL洁净的离心管中,再加入10 μL Std3,混匀,标记为ERC。
2)加标回收ERC和同批待测样本一起进行样本前处理,制备加标回收ERC纯化液。
3. 阴性抽提质控NCS的制备
根据实验设置阴性抽提质控NCS,具体操作如下:
1)取100 μL样本基质溶液(或DNA稀释液)加入1.5 mL洁净的离心管中,标记为NCS。
2)阴性质控NCS和同批待测样本一起进行样本前处理,制备成阴性质控NCS纯化液。
4. 无模板对照NTC的制备
根据实验设置无模板对照NTC,具体操作如下:
1)无模板对照NTC无需进行样本前处理,在qPCR法检测残留DNA含量阶段开始配置即可。
2)每管或孔中NTC样本为20 μL Mix混合液(即15 μL Vero qPCR Mix + 5μL Vero Primer&Probe Mix)+ 10 μL DNA Dilution Buffer,建议配置3个重复孔的量。
5. 反应体系
组分
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体积(μL)
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Vero qPCR Mix*
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15
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Vero Primer&Probe Mix
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4
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IC
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1
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DNA Template**
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10
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总体积***
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30
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表2 标准品反应体系
*根据反应孔数计算本次所需Mix混合液总量:Mix混合液=(反应孔数+2)× (15+4+1) μL(含有2孔的损失量)。通常,每个样本做3个重复孔。
**反应孔数=(6个浓度梯度的标准曲线+1个无模板对照NTC+1个阴性抽提质控NCS+待测样TS个数+待测样本对应加标回收ERC个数)× 3。
NTC (No Template Control):DNA Dilution Buffer
NCS (Negative Control Solution):样本基质溶液或DNA Dilution Buffer进行样本前处理后,所得纯化液为NCS
TS (Test Sample):待测样本
ERC (Extraction Recovery Control):待测样本中加入如10 μL的3 pg/μL标准品DNA后进行样本前处理,所得纯化液为加标回收ERC
***加样完成密封好管子后,请低速离心10 sec将管壁的液体离心收集至管底,再震荡混匀5 sec以上,完全混匀反应液,再低速离心10 sec将管壁的液体离心收集至管底,如有气泡,需将气泡排尽。
下表为参考板位:
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1
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2
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3
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4
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5
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6
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7
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8
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9
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10
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11
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12
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A
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NTC
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待测样本TS1
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待测样本TS1
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待测样本TS1
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标准曲线Std1
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标准曲线Std1
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标准曲线Std1
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B
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NTC
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待测样本TS2
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待测样本TS2
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待测样本TS2
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标准曲线Std2
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标准曲线Std2
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标准曲线Std2
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C
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NTC
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待测样本TS3
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待测样本TS3
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待测样本TS3
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标准曲线Std3
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标准曲线Std3
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标准曲线Std3
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D
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标准曲线Std4
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标准曲线Std4
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标准曲线Std4
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E
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NCS
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样本加标ERC1
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样本加标ERC1
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样本加标ERC1
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标准曲线Std5
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标准曲线Std5
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标准曲线Std5
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F
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NCS
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样本加标ERC2
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样本加标ERC2
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样本加标ERC2
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标准曲线Std6
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标准曲线Std6
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标准曲线Std6
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G
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NCS
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样本加标ERC3
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样本加标ERC3
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样本加标ERC3
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H
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表3 上机参考板位
该示例是对Vero残留DNA qPCR法检测操作的展示,检测样本包括:6个浓度梯度的Vero DNA标准曲线、1个无模板对照NTC、1个阴性质控NCS、3个待测样本TS、3个加样回收ERC。建议每个样本做3个重复孔。
6. 扩增程序参数设置(两步法)(以ABI公司7500 qPCR仪、软件版本2.0为例)
1)创建空白新程序,选择绝对定量检测模板。
2)创建2个检测探针,Target 1命名为“Vero-DNA”,选择报告荧光基团为“FAM”,猝灭荧光基团为“none”;Target 2命名为“IC”,选择报告荧光基团为“CY5”,猝灭荧光基团为“none”。参比荧光为“ROX”(参比荧光可根据仪器型号等情况,选择是否需要添加)。
3)在“Assign target (s) to the selected wells”面板中,将标准曲线孔的“Task”一栏设置为“Standard”,并且在“Quantity”一栏分别赋值为“300000”,“30000”,“3000”,“300”,“30”,“3”(含义为每孔DNA浓度,单位为fg/μL),并且在相应的“Sample Name”一栏命名为“300 pg/μL”,“30 pg/μL”,“3 pg/μL”,“300 fg/μL”,“30 fg/μL”,“3 fg/μL”;将无模板对照NTC孔的“Task”一栏设置为“NTC”;将阴性质控NCS孔、待测样本TS孔、样本加标回收ERC孔的“Task”一栏设置为“Unknown”,并且在相应的“Sample Name”一栏中分别命名为“NCS”、“TS”、“ERC”,参比荧光勾选“ROX”,之后点击“Start Run”,开始仪器运行。
4)扩增程序设置:设置三步法扩增程序,反应体积30 μL。
循环步骤
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温度(℃)
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时间
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循环数
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预变性
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95℃
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5 min
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1
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变性
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95℃
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15 sec
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40
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退火/延伸(收集荧光)
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60℃
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30 sec
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表4 扩增程序
7. qPCR结果分析
1)在“Analysis”的“Amplification Plot”面板中,系统会自动给出“Threshold”,有时系统给出的“Threshold”离基线太近,导致复孔之间Ct相差甚远,可手动调节“Threshold”至合适位置,点击“Analyze”。此时可在“Multicomponent Plot”初步查看扩增曲线的形态是否正常。
2)在“Analysis”的“Standard Curve”面板中,可读取标准曲线的R²、扩增效率(Eff%)、斜率(Slope)、截距(Intercept)等。正常的标曲:R²>0.99,扩增效率在90%≤Eff%≤110%范围内,Slope在-3.6~-3.1。
3)在“Analysis”的“View well table”面板中,“Quantity”一栏可读取无模板对照NTC、阴性质控NCS、待测样本TS、样本加标回收ERC的检测值,单位为fg/μL,后续可在检测报告中将单位换算成pg/μL或pg/mL。
4)结果分析的参数设置需依据具体的机型及使用的软件版本,一般也可由仪器自动判读。
5)根据待测样本TS和样本加标回收ERC的检测结果计算加标回收率,加标回收率要求在50%~150%之间。加标回收率计算公式:回收率(%) = {样本加标测定值(eg.pg/µL)-样本测定值(eg.pg/µL)}×洗脱体积(eg.µL) / DNA加入量理论值(eg.pg)×100%。
6)阴性质控NCS的Ct值应大于标曲最低浓度Ct的均值。
7)无模板对照NTC的检测结果应为Undetermined或Ct值≥35。
8)待测样本的Ct-IC值应该与NTC的Ct-IC值一致或±1,如果待测样本的Ct-IC值与NTC的Ct-IC值相比明显增大,则表明样本可能存在明显抑制。如果同时测试加标样本,则优先考虑样本加标回收率结果,IC结果作为参考。
Ver.CN20230517