蛋白A/G免疫(共)沉淀试剂盒 rProtein A/G IP/Co-IP Kit

蛋白A/G免疫(共)沉淀试剂盒 rProtein A/G IP/Co-IP Kit

产品说明书

FAQ

COA

已发表文献

产品简介

 

rProtein A/G IP/Co-IP kit (蛋白A/G免疫(共)沉淀试剂盒)是一种通过高质量的重组Protein A/G磁珠,配合用户自备的特异性抗体,进行目的蛋白免疫沉淀或免疫共沉淀的试剂盒。本试剂盒包含足够完成40个反应的试剂,每个反应使用25 uL磁珠,同时可进行10个阴性对照。

rProtein A/G免疫沉淀磁珠使用“纳米表面生物技术”(S-TEC),将rProtein A/G高密度定向包被到粒径为200 nm的纳米磁珠表面,纳米级磁珠提供的超大比表面积,具有更多的结合位点、更高的抗体结合能力和极低的蛋白非特异性吸附率。蛋白A/G免疫(共)沉淀试剂盒配有经过优化验证的必要试剂,为免疫沉淀实验提供了最佳的反应条件,增强了免疫沉淀实验的稳定性。本产品可广泛应用于细胞裂解物、细胞分泌上清、血清、腹水等样品中抗原的免疫沉淀反应。

天然蛋白A(Protein A)是一种发现于金黄色葡萄球菌的细胞壁表面蛋白,天然蛋白G(Protein G)是一种分离自G型或C型链球菌属的细胞表面蛋白,二者功能相似,主要通过与免疫球蛋白(Ig)的Fc区相互作用,可结合大多数哺乳动物的IgG,但在两者结合特异性上有所不同。rProtein A/G免疫磁珠同时共价偶联了蛋白A和蛋白G,比单独的蛋白A或者蛋白G都有更广的结合范围,实用性更高。同时,本品使用的是基因改造后的蛋白A和蛋白G,不仅维持其本身的Ig亲和特性,同时也去除了天然蛋白本身的非主要结合域以降低非特异性结合。

 

产品信息

 

类别

编号

组分名称

36421ES40(40T)

保存方式

翌圣货号

Part Ⅰ

36421-A

Lysis Buffer for IP Assays

免疫沉淀用(IP)裂解液

100 mL

-25~-15℃

20118ES

36421-B

蛋白酶抑制剂Cocktail,EDTA-free,100×DMSO储液

1 mL

-25~-15℃

20124ES

36421-C

Mouse IgG(1mg/mL)

25 uL

-25~-15℃

36111ES

36421-D

Rabbit IgG(1mg/mL)

25 uL

-25~-15℃

36113ES

36421-E

5×SDS-PAGE蛋白上样缓冲液

1 mL

-25~-15℃

20315ES

Part Ⅱ

36421-F

rProtein A/G MagBeads (IP Grade)

1 mL

2~8℃

36417ES

36421-G

1x TBS Buffer,TBS 缓冲液(粉末),PH 7.4,1L

1 L

RT

60157ES

36421-H

洗脱缓冲液

5 mL

2~8℃

N/A

36421-I

中和缓冲液

1 mL

2~8℃

N/A

 

储存条件

 

Part Ⅰ-25~-15℃保存;Part 2~8℃保存;有效期1年。

Part Ⅱ中的rProtein A/G MagBeads (IP Grade)避免冷冻。

 

使用说明

 

工作液浓度应根据具体实验确定,建议进行预实验摸索最佳实验浓度。

  1. 缓冲液配制

裂解缓冲液:免疫沉淀用(IP)裂解液(36421-A)可解冻后直接使用。

平衡/结合/洗杂缓冲液:1x TBS Buffer,TBS 缓冲液(粉末),PH 7.4,1L(36421-G), 使用时用蒸馏水或超纯水溶解,定容至1L即可。

洗脱缓冲液:洗脱缓冲液(36421-H)可直接使用。

中和缓冲液:中和缓冲液(36421-I)可直接使用。

SDS-PAGE Sample Loading Buffer (1X)的配制:取适量SDS-PAGE Sample Loading Buffer (5X)(36421-E)用水稀释5倍即为SDS-PAGE Sample Loading Buffer (1X)。

  1. 抗原样品制备

本操作说明书提供以下四种样品处理方法,建议您根据不同来源的抗原样品选择适当的方式进行预处理,使待检测抗原释放至样品溶液中。

血清样品处理:若目标蛋白丰度较高, 建议用结合缓冲液稀释血清样品至目标蛋白终浓度为10-100 µg/mL,置于冰上备用(或置于-20℃长期保存)。

悬浮细胞样品处理:离心收集细胞(4℃, 1000g, 5 min),用手指把细胞用力弹散。按照6孔板每孔细胞加入150-250 μL裂解液的比例加入含蛋白酶抑制剂的裂解液裂解液在使用前数分钟内加入蛋白酶抑制剂Cocktail,使蛋白酶抑制剂Cocktail的最终浓度为混匀后置于冰上处理10 min;离心收集上清液(4℃, 14000g, 10 min),置于冰上备用(或置于-20℃长期保存)。

贴壁细胞样品处理:移去培养基,用PBS清洗细胞遍;用细胞刮棒刮脱细胞,收集至1.5mL EP管内按照6孔板每孔加入150-250 μL裂解液的比例加入含蛋白酶抑制剂的裂解液裂解液在使用前数分钟内加入蛋白酶抑制剂Cocktail,使蛋白酶抑制剂Cocktail的最终浓度为用枪吹打数下,使裂解液和细胞充分接触。混匀后置于冰上处理10 min;离心收集上清液(4℃, 14000g, 10 min),置于冰上备用(或置于-20℃长期保存)。

大肠杆菌样品处理 离心收集大肠杆菌(4℃, 12000g, 2 min),弃上清后称重, 按每克(湿重)菌体10 mL的比例用1×PBS洗涤2次;按每克(湿重)菌体5-10 mL的比例加入结合缓冲液,同时加入蛋白酶抑制剂Cocktail,重悬菌体,超声裂解细胞,离心收集上清(4℃, 17000g, 10 min)。

  1.  磁珠预处理
  1. 将磁珠漩涡振荡1 min,使其充分混悬;
  2. 25 µL磁珠悬液置于1.5 mL EP管中放置在磁分离器上,待溶液变澄清后,用移液器吸弃保护液。
  3. 加入200 µL结合缓冲液洗涤,进行磁性分离,吸弃上清,重复1次。

4.  抗体吸附

1)  加入目标抗体溶液2-10 µg抗体总量),充分混匀

2)  室温孵育 10 min,可以振荡或漩涡混合均匀。

3)  EP 管置于磁分离器上,待磁珠全部吸附后,吸弃上清液。如需要可留做进一步检测。

4)  加入500 μL 洗杂液混合均匀,置于磁分离器上,待磁珠全部吸附后,吸弃上清液。重复洗杂至少 3次。 

可选做:使用抗体种属相同的正常IgG配制相同稀释比或终浓度的正常IgG工作液,以用于去除非特异性结合或作为阴性对照。所谓种属相同的正常IgG是指,例如后续免疫沉淀时用的抗体是小鼠IgG,则在本步骤中可以用TBS稀释适量的Mouse IgG等以用于降低背景或作为阴性对照。

5 抗原结合反应

1)  加入含有抗原的样品(通常300-500 μL,每个免疫沉淀反应推荐的总蛋白量为 500 ~1500 μg),用移液器轻轻吹打使抗原与磁珠-抗体复合物均匀分散。

2)  在室温下置于翻转混合仪或者手工轻轻翻转离心管 10 min,使抗原与抗体充分结合,如结合力较弱则可在室温下反应1h或者在4℃下反应过夜。

3)  上述完成抗原吸附的磁珠-抗体-抗原复合物进行磁性分离,收集上清液,以备后续检测。

4)  向离心管中加入1 mL洗杂液,用移液器轻轻吹打使磁珠-抗体-抗原复合物均匀分散,然后进行磁性分离,弃上清液;从磁分离器上取下离心管,再重复洗涤两次。

6.抗原洗脱

A. 变性洗脱 此方法洗脱的样品适用于SDS-PAGE检测。

1) 从磁分离器上取下离心管,向其中加入80~100 μL 1×SDS-PAGE Loading Buffer 混合均匀, 95℃加热 5min。

2) 置于磁性分离器上,进行磁性分离,收集上清液进行SDS-PAGE检测。

B. 非变性洗脱

1) 向磁珠-抗体-抗原复合物中加入100 μL洗脱液,混合均匀,室温孵育10 min。

2) 置于磁性分离器上,进行磁性分离,收集洗脱液至新的 EP 管中。

3) 重复步骤 1)和2),收集洗脱液,与2)中洗脱液混合,加入中和液中和至 pH7.0-8.0。

 

注意事项

 

1. 请勿高速离心、干燥或冷冻磁珠,这些操作会导致磁珠聚集而降低结合能力。

2. 本试剂盒提供的Lysis Buffer for IP Assays经反复测试,适合很多情况下的免疫沉淀或免疫共沉淀时的样品裂解和后续的洗涤。但 IP 实验中不同类型的抗体与抗原结合的亲和性是有区别的,抗体与抗原结合还会受到 Lysis/Wash Buffer 的影响,因此可自行优化操作细节或者筛选及配制缓冲液进行实验。

3. 本产品仅作科研用途

4. 为了您的安全和健康,请穿实验服并佩戴一次性手套操作。

Ver.CN20240117

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暂无内容

蛋白A/G免疫(共)沉淀试剂盒 rProtein A/G IP/Co-IP Kit

暂无内容

产品简介

 

rProtein A/G IP/Co-IP kit (蛋白A/G免疫(共)沉淀试剂盒)是一种通过高质量的重组Protein A/G磁珠,配合用户自备的特异性抗体,进行目的蛋白免疫沉淀或免疫共沉淀的试剂盒。本试剂盒包含足够完成40个反应的试剂,每个反应使用25 uL磁珠,同时可进行10个阴性对照。

rProtein A/G免疫沉淀磁珠使用“纳米表面生物技术”(S-TEC),将rProtein A/G高密度定向包被到粒径为200 nm的纳米磁珠表面,纳米级磁珠提供的超大比表面积,具有更多的结合位点、更高的抗体结合能力和极低的蛋白非特异性吸附率。蛋白A/G免疫(共)沉淀试剂盒配有经过优化验证的必要试剂,为免疫沉淀实验提供了最佳的反应条件,增强了免疫沉淀实验的稳定性。本产品可广泛应用于细胞裂解物、细胞分泌上清、血清、腹水等样品中抗原的免疫沉淀反应。

天然蛋白A(Protein A)是一种发现于金黄色葡萄球菌的细胞壁表面蛋白,天然蛋白G(Protein G)是一种分离自G型或C型链球菌属的细胞表面蛋白,二者功能相似,主要通过与免疫球蛋白(Ig)的Fc区相互作用,可结合大多数哺乳动物的IgG,但在两者结合特异性上有所不同。rProtein A/G免疫磁珠同时共价偶联了蛋白A和蛋白G,比单独的蛋白A或者蛋白G都有更广的结合范围,实用性更高。同时,本品使用的是基因改造后的蛋白A和蛋白G,不仅维持其本身的Ig亲和特性,同时也去除了天然蛋白本身的非主要结合域以降低非特异性结合。

 

产品信息

 

类别

编号

组分名称

36421ES40(40T)

保存方式

翌圣货号

Part Ⅰ

36421-A

Lysis Buffer for IP Assays

免疫沉淀用(IP)裂解液

100 mL

-25~-15℃

20118ES

36421-B

蛋白酶抑制剂Cocktail,EDTA-free,100×DMSO储液

1 mL

-25~-15℃

20124ES

36421-C

Mouse IgG(1mg/mL)

25 uL

-25~-15℃

36111ES

36421-D

Rabbit IgG(1mg/mL)

25 uL

-25~-15℃

36113ES

36421-E

5×SDS-PAGE蛋白上样缓冲液

1 mL

-25~-15℃

20315ES

Part Ⅱ

36421-F

rProtein A/G MagBeads (IP Grade)

1 mL

2~8℃

36417ES

36421-G

1x TBS Buffer,TBS 缓冲液(粉末),PH 7.4,1L

1 L

RT

60157ES

36421-H

洗脱缓冲液

5 mL

2~8℃

N/A

36421-I

中和缓冲液

1 mL

2~8℃

N/A

 

储存条件

 

Part Ⅰ-25~-15℃保存;Part 2~8℃保存;有效期1年。

Part Ⅱ中的rProtein A/G MagBeads (IP Grade)避免冷冻。

 

使用说明

 

工作液浓度应根据具体实验确定,建议进行预实验摸索最佳实验浓度。

  1. 缓冲液配制

裂解缓冲液:免疫沉淀用(IP)裂解液(36421-A)可解冻后直接使用。

平衡/结合/洗杂缓冲液:1x TBS Buffer,TBS 缓冲液(粉末),PH 7.4,1L(36421-G), 使用时用蒸馏水或超纯水溶解,定容至1L即可。

洗脱缓冲液:洗脱缓冲液(36421-H)可直接使用。

中和缓冲液:中和缓冲液(36421-I)可直接使用。

SDS-PAGE Sample Loading Buffer (1X)的配制:取适量SDS-PAGE Sample Loading Buffer (5X)(36421-E)用水稀释5倍即为SDS-PAGE Sample Loading Buffer (1X)。

  1. 抗原样品制备

本操作说明书提供以下四种样品处理方法,建议您根据不同来源的抗原样品选择适当的方式进行预处理,使待检测抗原释放至样品溶液中。

血清样品处理:若目标蛋白丰度较高, 建议用结合缓冲液稀释血清样品至目标蛋白终浓度为10-100 µg/mL,置于冰上备用(或置于-20℃长期保存)。

悬浮细胞样品处理:离心收集细胞(4℃, 1000g, 5 min),用手指把细胞用力弹散。按照6孔板每孔细胞加入150-250 μL裂解液的比例加入含蛋白酶抑制剂的裂解液裂解液在使用前数分钟内加入蛋白酶抑制剂Cocktail,使蛋白酶抑制剂Cocktail的最终浓度为混匀后置于冰上处理10 min;离心收集上清液(4℃, 14000g, 10 min),置于冰上备用(或置于-20℃长期保存)。

贴壁细胞样品处理:移去培养基,用PBS清洗细胞遍;用细胞刮棒刮脱细胞,收集至1.5mL EP管内按照6孔板每孔加入150-250 μL裂解液的比例加入含蛋白酶抑制剂的裂解液裂解液在使用前数分钟内加入蛋白酶抑制剂Cocktail,使蛋白酶抑制剂Cocktail的最终浓度为用枪吹打数下,使裂解液和细胞充分接触。混匀后置于冰上处理10 min;离心收集上清液(4℃, 14000g, 10 min),置于冰上备用(或置于-20℃长期保存)。

大肠杆菌样品处理 离心收集大肠杆菌(4℃, 12000g, 2 min),弃上清后称重, 按每克(湿重)菌体10 mL的比例用1×PBS洗涤2次;按每克(湿重)菌体5-10 mL的比例加入结合缓冲液,同时加入蛋白酶抑制剂Cocktail,重悬菌体,超声裂解细胞,离心收集上清(4℃, 17000g, 10 min)。

  1.  磁珠预处理
  1. 将磁珠漩涡振荡1 min,使其充分混悬;
  2. 25 µL磁珠悬液置于1.5 mL EP管中放置在磁分离器上,待溶液变澄清后,用移液器吸弃保护液。
  3. 加入200 µL结合缓冲液洗涤,进行磁性分离,吸弃上清,重复1次。

4.  抗体吸附

1)  加入目标抗体溶液2-10 µg抗体总量),充分混匀

2)  室温孵育 10 min,可以振荡或漩涡混合均匀。

3)  EP 管置于磁分离器上,待磁珠全部吸附后,吸弃上清液。如需要可留做进一步检测。

4)  加入500 μL 洗杂液混合均匀,置于磁分离器上,待磁珠全部吸附后,吸弃上清液。重复洗杂至少 3次。 

可选做:使用抗体种属相同的正常IgG配制相同稀释比或终浓度的正常IgG工作液,以用于去除非特异性结合或作为阴性对照。所谓种属相同的正常IgG是指,例如后续免疫沉淀时用的抗体是小鼠IgG,则在本步骤中可以用TBS稀释适量的Mouse IgG等以用于降低背景或作为阴性对照。

5 抗原结合反应

1)  加入含有抗原的样品(通常300-500 μL,每个免疫沉淀反应推荐的总蛋白量为 500 ~1500 μg),用移液器轻轻吹打使抗原与磁珠-抗体复合物均匀分散。

2)  在室温下置于翻转混合仪或者手工轻轻翻转离心管 10 min,使抗原与抗体充分结合,如结合力较弱则可在室温下反应1h或者在4℃下反应过夜。

3)  上述完成抗原吸附的磁珠-抗体-抗原复合物进行磁性分离,收集上清液,以备后续检测。

4)  向离心管中加入1 mL洗杂液,用移液器轻轻吹打使磁珠-抗体-抗原复合物均匀分散,然后进行磁性分离,弃上清液;从磁分离器上取下离心管,再重复洗涤两次。

6.抗原洗脱

A. 变性洗脱 此方法洗脱的样品适用于SDS-PAGE检测。

1) 从磁分离器上取下离心管,向其中加入80~100 μL 1×SDS-PAGE Loading Buffer 混合均匀, 95℃加热 5min。

2) 置于磁性分离器上,进行磁性分离,收集上清液进行SDS-PAGE检测。

B. 非变性洗脱

1) 向磁珠-抗体-抗原复合物中加入100 μL洗脱液,混合均匀,室温孵育10 min。

2) 置于磁性分离器上,进行磁性分离,收集洗脱液至新的 EP 管中。

3) 重复步骤 1)和2),收集洗脱液,与2)中洗脱液混合,加入中和液中和至 pH7.0-8.0。

 

注意事项

 

1. 请勿高速离心、干燥或冷冻磁珠,这些操作会导致磁珠聚集而降低结合能力。

2. 本试剂盒提供的Lysis Buffer for IP Assays经反复测试,适合很多情况下的免疫沉淀或免疫共沉淀时的样品裂解和后续的洗涤。但 IP 实验中不同类型的抗体与抗原结合的亲和性是有区别的,抗体与抗原结合还会受到 Lysis/Wash Buffer 的影响,因此可自行优化操作细节或者筛选及配制缓冲液进行实验。

3. 本产品仅作科研用途

4. 为了您的安全和健康,请穿实验服并佩戴一次性手套操作。

Ver.CN20240117

蛋白A/G免疫(共)沉淀试剂盒 rProtein A/G IP/Co-IP Kit

暂无内容

蛋白A/G免疫(共)沉淀试剂盒 rProtein A/G IP/Co-IP Kit

暂无内容

蛋白L免疫磁珠 rProtein L MagBeads(IP Grade)

蛋白L免疫磁珠 rProtein L MagBeads(IP Grade)

产品说明书

FAQ

COA

已发表文献

 

rProtein L免疫沉淀磁珠是粒径为200 nm的纳米磁珠表面上共价偶联了大量的 Protein L蛋白,纳米级磁珠提供的超大比表面积,具有更多的结合位点,磁珠使用量更少,非特异性吸附率低。重组 Protein L蛋白是一种免疫球蛋白结合蛋白,可在不影响抗原结合的情况下与免疫球蛋白K轻链结合。相对于Protein A和Protein G等其它抗体结合蛋白,Protein L具有更广的Ig和Ig亚型结合范围。本品适用的范围广泛,可应用于细胞裂解液、细胞分泌液上清、血清、动物腹水以及其它的免疫抗原等样本的免疫沉淀(IP)和免疫共沉淀(COIP)

 

产品性质

基质(Matrix spherical)

硅基磁珠

配体(Ligand)

重组Protein L

结合能力(Binding Capacity)

0.5 mg hIgG /mL磁珠

粒径 Particle size)

200 nm

磁珠浓度(Concentration)

10 mg/mL

应用(Application)

IP、COIP、CHIP、RIP等

 

运输和保存方法

冰袋运输。2-8℃长期储存,有效期2年。

 

注意事项

1.为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

2.本产品仅作科研用途!

 

使用方法

1. 缓冲液配制

平衡/结合/洗杂液:

0.15 M NaCl, 20 mM Na2HPO4, pH 7.0

中和缓冲液:

1 M Tris-HCl,pH 8.5

洗脱缓冲液:

0.1 M 甘氨酸,pH 3.0

终止液:

50 mM Tris, pH 7.5

注:上述缓冲液为推荐的缓冲液配制,但IP实验中不同类型的抗体与抗原结合的亲和性是有区别的,抗体与抗原结合还会受到IP Lysis/Wash Buffer 的影响,因此可自行优化操作细节或者筛选及配制缓冲液进行实验。

2. 抗原样品制备

本操作说明书提供以下四种样品处理方法,建议您根据不同来源的抗原样品选择适当的方式进行预处理,使待检测抗原释放至样品溶液中。

血清样品处理:若目标蛋白丰度较高, 建议用结合缓冲液稀释血清样品至目标蛋白终浓度为10-100 µg/mL,置于冰上备用(或置于-20℃长期保存)。

悬浮细胞样品处理:离心收集细胞(4℃, 500g, 10 min),弃上清后称重,按每毫克细胞50 µL的比例用1×PBS洗涤2次;按每毫克细胞5-10 µL的比例加入结合缓冲液,同时加入蛋白酶抑制剂,混匀后置于冰上处理10 min;离心收集上清液(4℃, 14000g, 10 min),置于冰上备用(或置于-20℃长期保存)。

贴壁细胞样品处理:移去培养基,按每 1.0×105个细胞150 µL的比例用1×PBS洗涤两次;用细胞刮棒刮脱细胞,收集至1.5 mL EP管内,按每 1.0×105个细胞20-30 µL的比例加入结合缓冲液,同时加入蛋白酶抑制剂,混匀后置于冰上处理10 min;离心收集上清液(4℃, 14000g, 10 min),置于冰上备用(或置于-20℃长期保存)。

大肠杆菌样品处理 离心收集大肠杆菌(4℃, 12000g, 2 min), 弃上清后称重, 按每克(湿重)菌体10 mL的比例用1×PBS洗涤2次;按每克(湿重)菌体5-10 mL的比例加入结合缓冲液,同时加入蛋白酶抑制剂,重悬菌体,超声裂解细胞,离心收集上清(4℃, 17000g, 10 min)。

3.免疫复合物的制备:

注意:样品所需的量和孵育时间均依赖于每个特定的抗体-抗原体系,因而可能需要优化才能得到最大产量。

以下实验方案针对 2~10 μg 亲和纯化的抗体,根据需 要可以按比例放大。

1)在离心管中,将每个样品的细胞裂解液与 2~10 μg 免疫沉淀抗体结合。每个免疫沉淀反应推荐的总蛋白量为500 ~1500 μg。

2)用IP Lysis/Wash Buffer将抗体以及制备好的样品稀释至 300~500 μL。

3)在室温下孵育 1~2 h,或 4℃ 2~4 h,以形成免疫复合物。

4. 磁珠预处理:将磁珠漩涡振荡1 min,使其充分混悬;取25-50 µL磁珠悬液置于1.5 mL EP管中。加入500 µL预冷结合缓冲液洗涤,进行磁性分离,吸弃上清,重复1次。加入200 µL结合缓冲液重悬磁珠备用。

5. 免疫沉淀 

1) 将抗原样品/抗体混合物加入装有磁珠的离心管中保持混匀室温下孵育1~2 h,或4℃ 2~4 h。

2) 上述磁珠-抗体-抗原复合物进行磁性分离,收集上清液,以备后续检测。

3) 向离心管中加入1 mL洗杂液,用移液器轻轻吹打使磁珠-抗体-抗原复合物均匀分散,然后进行磁性分离,弃上清液;从磁分离器上取下离心管,再重复洗涤两次。

6.抗原洗脱

A. 变性洗脱 此方法洗脱的样品适用于SDS-PAGE检测。

1) 从磁分离器上取下离心管,向其中加入25 μL 1×SDS-PAGE Loading Buffer 混合均匀, 95℃加热5 min。

2) 置于磁性分离器上,进行磁性分离,收集上清液进行SDS-PAGE检测。

B. 非变性洗脱

1) 向磁珠-抗体-抗原复合物中加入50 μL洗脱液,混合均匀,室温孵育5 min。

2) 置于磁性分离器上,进行磁性分离,收集洗脱液至新的 EP 管中。

3) 重复步骤 1)和2),收集洗脱液,与2)中洗脱液混合,加入中和液中和至 pH7.0-8.0。

                                                                        HB230106

蛋白L免疫磁珠 rProtein L MagBeads(IP Grade)

暂无内容

蛋白L免疫磁珠 rProtein L MagBeads(IP Grade)

暂无内容

 

rProtein L免疫沉淀磁珠是粒径为200 nm的纳米磁珠表面上共价偶联了大量的 Protein L蛋白,纳米级磁珠提供的超大比表面积,具有更多的结合位点,磁珠使用量更少,非特异性吸附率低。重组 Protein L蛋白是一种免疫球蛋白结合蛋白,可在不影响抗原结合的情况下与免疫球蛋白K轻链结合。相对于Protein A和Protein G等其它抗体结合蛋白,Protein L具有更广的Ig和Ig亚型结合范围。本品适用的范围广泛,可应用于细胞裂解液、细胞分泌液上清、血清、动物腹水以及其它的免疫抗原等样本的免疫沉淀(IP)和免疫共沉淀(COIP)

 

产品性质

基质(Matrix spherical)

硅基磁珠

配体(Ligand)

重组Protein L

结合能力(Binding Capacity)

0.5 mg hIgG /mL磁珠

粒径 Particle size)

200 nm

磁珠浓度(Concentration)

10 mg/mL

应用(Application)

IP、COIP、CHIP、RIP等

 

运输和保存方法

冰袋运输。2-8℃长期储存,有效期2年。

 

注意事项

1.为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

2.本产品仅作科研用途!

 

使用方法

1. 缓冲液配制

平衡/结合/洗杂液:

0.15 M NaCl, 20 mM Na2HPO4, pH 7.0

中和缓冲液:

1 M Tris-HCl,pH 8.5

洗脱缓冲液:

0.1 M 甘氨酸,pH 3.0

终止液:

50 mM Tris, pH 7.5

注:上述缓冲液为推荐的缓冲液配制,但IP实验中不同类型的抗体与抗原结合的亲和性是有区别的,抗体与抗原结合还会受到IP Lysis/Wash Buffer 的影响,因此可自行优化操作细节或者筛选及配制缓冲液进行实验。

2. 抗原样品制备

本操作说明书提供以下四种样品处理方法,建议您根据不同来源的抗原样品选择适当的方式进行预处理,使待检测抗原释放至样品溶液中。

血清样品处理:若目标蛋白丰度较高, 建议用结合缓冲液稀释血清样品至目标蛋白终浓度为10-100 µg/mL,置于冰上备用(或置于-20℃长期保存)。

悬浮细胞样品处理:离心收集细胞(4℃, 500g, 10 min),弃上清后称重,按每毫克细胞50 µL的比例用1×PBS洗涤2次;按每毫克细胞5-10 µL的比例加入结合缓冲液,同时加入蛋白酶抑制剂,混匀后置于冰上处理10 min;离心收集上清液(4℃, 14000g, 10 min),置于冰上备用(或置于-20℃长期保存)。

贴壁细胞样品处理:移去培养基,按每 1.0×105个细胞150 µL的比例用1×PBS洗涤两次;用细胞刮棒刮脱细胞,收集至1.5 mL EP管内,按每 1.0×105个细胞20-30 µL的比例加入结合缓冲液,同时加入蛋白酶抑制剂,混匀后置于冰上处理10 min;离心收集上清液(4℃, 14000g, 10 min),置于冰上备用(或置于-20℃长期保存)。

大肠杆菌样品处理 离心收集大肠杆菌(4℃, 12000g, 2 min), 弃上清后称重, 按每克(湿重)菌体10 mL的比例用1×PBS洗涤2次;按每克(湿重)菌体5-10 mL的比例加入结合缓冲液,同时加入蛋白酶抑制剂,重悬菌体,超声裂解细胞,离心收集上清(4℃, 17000g, 10 min)。

3.免疫复合物的制备:

注意:样品所需的量和孵育时间均依赖于每个特定的抗体-抗原体系,因而可能需要优化才能得到最大产量。

以下实验方案针对 2~10 μg 亲和纯化的抗体,根据需 要可以按比例放大。

1)在离心管中,将每个样品的细胞裂解液与 2~10 μg 免疫沉淀抗体结合。每个免疫沉淀反应推荐的总蛋白量为500 ~1500 μg。

2)用IP Lysis/Wash Buffer将抗体以及制备好的样品稀释至 300~500 μL。

3)在室温下孵育 1~2 h,或 4℃ 2~4 h,以形成免疫复合物。

4. 磁珠预处理:将磁珠漩涡振荡1 min,使其充分混悬;取25-50 µL磁珠悬液置于1.5 mL EP管中。加入500 µL预冷结合缓冲液洗涤,进行磁性分离,吸弃上清,重复1次。加入200 µL结合缓冲液重悬磁珠备用。

5. 免疫沉淀 

1) 将抗原样品/抗体混合物加入装有磁珠的离心管中保持混匀室温下孵育1~2 h,或4℃ 2~4 h。

2) 上述磁珠-抗体-抗原复合物进行磁性分离,收集上清液,以备后续检测。

3) 向离心管中加入1 mL洗杂液,用移液器轻轻吹打使磁珠-抗体-抗原复合物均匀分散,然后进行磁性分离,弃上清液;从磁分离器上取下离心管,再重复洗涤两次。

6.抗原洗脱

A. 变性洗脱 此方法洗脱的样品适用于SDS-PAGE检测。

1) 从磁分离器上取下离心管,向其中加入25 μL 1×SDS-PAGE Loading Buffer 混合均匀, 95℃加热5 min。

2) 置于磁性分离器上,进行磁性分离,收集上清液进行SDS-PAGE检测。

B. 非变性洗脱

1) 向磁珠-抗体-抗原复合物中加入50 μL洗脱液,混合均匀,室温孵育5 min。

2) 置于磁性分离器上,进行磁性分离,收集洗脱液至新的 EP 管中。

3) 重复步骤 1)和2),收集洗脱液,与2)中洗脱液混合,加入中和液中和至 pH7.0-8.0。

                                                                        HB230106

蛋白L免疫磁珠 rProtein L MagBeads(IP Grade)

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产品说明书

FAQ

COA

已发表文献

 

rProtein G免疫沉淀磁珠是粒径为 200nm 的纳米磁珠表面上共价偶联了大量的 Protein G 蛋白,纳米级磁珠提供的超大比表面积,具有更多的结合位点,磁珠使用量更少,非特异性吸附率低。重组 Protein G 蛋白更适合于结合mouse IgG1, IgG2a, IgG2b, IgG3, rat IgG1, IgG2a, IgG2b, IgG2c, rabbit and goat polyclonal Abs, 以及human IgG1, IgG2, IgG3 和 IgG4。本品适用的范围广泛,可应用于细胞裂解液、细胞分泌液上清、血清、动物腹水以及其它的免疫抗原等样本的免疫沉淀(IP)和免疫共沉淀(COIP)

 

产品性质

基质(Matrix spherical)

硅基磁珠

配体(Ligand)

重组Protein G

结合能力(Binding Capacity)

0.85 mg hIgG /mL磁珠

粒径 Particle size)

200 nm

磁珠浓度(Concentration)

10 mg/mL

应用(Application)

IP、COIP、CHIP、RIP等

 

运输和保存方法

冰袋运输。2-8℃长期储存,有效期2年。

 

注意事项

1.为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

2.本产品仅作科研用途!

 

使用方法

1. 缓冲液配制

平衡/结合/洗杂液:

0.15 M NaCl, 20 mM Na2HPO4, pH 7.0

中和缓冲液:

1 M Tris-HCl,pH 8.5

洗脱缓冲液:

0.1 M 甘氨酸,pH 3.0

终止液:

50 mM Tris, pH 7.5

注:上述缓冲液为推荐的缓冲液配制,但IP实验中不同类型的抗体与抗原结合的亲和性是有区别的,抗体与抗原结合还会受到IP Lysis/Wash Buffer 的影响,因此可自行优化操作细节或者筛选及配制缓冲液进行实验。

2. 抗原样品制备

本操作说明书提供以下四种样品处理方法,建议您根据不同来源的抗原样品选择适当的方式进行预处理,使待检测抗原释放至样品溶液中。

血清样品处理:若目标蛋白丰度较高, 建议用结合缓冲液稀释血清样品至目标蛋白终浓度为10-100 µg/mL,置于冰上备用(或置于-20℃长期保存)。

悬浮细胞样品处理:离心收集细胞(4℃, 500g, 10 min),弃上清后称重,按每毫克细胞50 µL的比例用1×PBS洗涤2次;按每毫克细胞5-10 µL的比例加入结合缓冲液,同时加入蛋白酶抑制剂,混匀后置于冰上处理10 min;离心收集上清液(4℃, 14000g, 10 min),置于冰上备用(或置于-20℃长期保存)。

贴壁细胞样品处理:移去培养基,按每 1.0×105个细胞150 µL的比例用1×PBS洗涤两次;用细胞刮棒刮脱细胞,收集至1.5 mL EP管内,按每 1.0×105个细胞20-30 µL的比例加入结合缓冲液,同时加入蛋白酶抑制剂,混匀后置于冰上处理10 min;离心收集上清液(4℃, 14000g, 10 min),置于冰上备用(或置于-20℃长期保存)。

大肠杆菌样品处理 离心收集大肠杆菌(4℃, 12000g, 2 min), 弃上清后称重, 按每克(湿重)菌体10 mL的比例用1×PBS洗涤2次;按每克(湿重)菌体5-10 mL的比例加入结合缓冲液,同时加入蛋白酶抑制剂,重悬菌体,超声裂解细胞,离心收集上清(4℃, 17000g, 10 min)。

3.免疫复合物的制备:

注意:样品所需的量和孵育时间均依赖于每个特定的抗体-抗原体系,因而可能需要优化才能得到最大产量。

以下实验方案针对 2~10 μg 亲和纯化的抗体,根据需 要可以按比例放大。

1)在离心管中,将每个样品的细胞裂解液与 2~10 μg 免疫沉淀抗体结合。每个免疫沉淀反应推荐的总蛋白量为500 ~1500 μg。

2)用IP Lysis/Wash Buffer将抗体以及制备好的样品稀释至 300~500 μL。

3)在室温下孵育 1~2 h,或 4℃ 2~4 h,以形成免疫复合物。

4. 磁珠预处理:将磁珠漩涡振荡1 min,使其充分混悬;取25-50 µL磁珠悬液置于1.5 mL EP管中。加入500 µL预冷结合缓冲液洗涤,进行磁性分离,吸弃上清,重复1次。加入200 µL结合缓冲液重悬磁珠备用。

5. 免疫沉淀 

1) 将抗原样品/抗体混合物加入装有磁珠的离心管中保持混匀室温下孵育1~2 h,或4℃ 2~4 h。

2) 上述磁珠-抗体-抗原复合物进行磁性分离,收集上清液,以备后续检测。

3) 向离心管中加入1 mL洗杂液,用移液器轻轻吹打使磁珠-抗体-抗原复合物均匀分散,然后进行磁性分离,弃上清液;从磁分离器上取下离心管,再重复洗涤两次。

6.抗原洗脱

A. 变性洗脱 此方法洗脱的样品适用于SDS-PAGE检测。

1) 从磁分离器上取下离心管,向其中加入25 μL 1×SDS-PAGE Loading Buffer 混合均匀, 95℃加热5 min。

2) 置于磁性分离器上,进行磁性分离,收集上清液进行SDS-PAGE检测。

B. 非变性洗脱

1) 向磁珠-抗体-抗原复合物中加入50 μL洗脱液,混合均匀,室温孵育5 min。

2) 置于磁性分离器上,进行磁性分离,收集洗脱液至新的 EP 管中。

3) 重复步骤 1)和2),收集洗脱液,与2)中洗脱液混合,加入中和液中和至 pH7.0-8.0。

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rProtein G免疫沉淀磁珠是粒径为 200nm 的纳米磁珠表面上共价偶联了大量的 Protein G 蛋白,纳米级磁珠提供的超大比表面积,具有更多的结合位点,磁珠使用量更少,非特异性吸附率低。重组 Protein G 蛋白更适合于结合mouse IgG1, IgG2a, IgG2b, IgG3, rat IgG1, IgG2a, IgG2b, IgG2c, rabbit and goat polyclonal Abs, 以及human IgG1, IgG2, IgG3 和 IgG4。本品适用的范围广泛,可应用于细胞裂解液、细胞分泌液上清、血清、动物腹水以及其它的免疫抗原等样本的免疫沉淀(IP)和免疫共沉淀(COIP)

 

产品性质

基质(Matrix spherical)

硅基磁珠

配体(Ligand)

重组Protein G

结合能力(Binding Capacity)

0.85 mg hIgG /mL磁珠

粒径 Particle size)

200 nm

磁珠浓度(Concentration)

10 mg/mL

应用(Application)

IP、COIP、CHIP、RIP等

 

运输和保存方法

冰袋运输。2-8℃长期储存,有效期2年。

 

注意事项

1.为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

2.本产品仅作科研用途!

 

使用方法

1. 缓冲液配制

平衡/结合/洗杂液:

0.15 M NaCl, 20 mM Na2HPO4, pH 7.0

中和缓冲液:

1 M Tris-HCl,pH 8.5

洗脱缓冲液:

0.1 M 甘氨酸,pH 3.0

终止液:

50 mM Tris, pH 7.5

注:上述缓冲液为推荐的缓冲液配制,但IP实验中不同类型的抗体与抗原结合的亲和性是有区别的,抗体与抗原结合还会受到IP Lysis/Wash Buffer 的影响,因此可自行优化操作细节或者筛选及配制缓冲液进行实验。

2. 抗原样品制备

本操作说明书提供以下四种样品处理方法,建议您根据不同来源的抗原样品选择适当的方式进行预处理,使待检测抗原释放至样品溶液中。

血清样品处理:若目标蛋白丰度较高, 建议用结合缓冲液稀释血清样品至目标蛋白终浓度为10-100 µg/mL,置于冰上备用(或置于-20℃长期保存)。

悬浮细胞样品处理:离心收集细胞(4℃, 500g, 10 min),弃上清后称重,按每毫克细胞50 µL的比例用1×PBS洗涤2次;按每毫克细胞5-10 µL的比例加入结合缓冲液,同时加入蛋白酶抑制剂,混匀后置于冰上处理10 min;离心收集上清液(4℃, 14000g, 10 min),置于冰上备用(或置于-20℃长期保存)。

贴壁细胞样品处理:移去培养基,按每 1.0×105个细胞150 µL的比例用1×PBS洗涤两次;用细胞刮棒刮脱细胞,收集至1.5 mL EP管内,按每 1.0×105个细胞20-30 µL的比例加入结合缓冲液,同时加入蛋白酶抑制剂,混匀后置于冰上处理10 min;离心收集上清液(4℃, 14000g, 10 min),置于冰上备用(或置于-20℃长期保存)。

大肠杆菌样品处理 离心收集大肠杆菌(4℃, 12000g, 2 min), 弃上清后称重, 按每克(湿重)菌体10 mL的比例用1×PBS洗涤2次;按每克(湿重)菌体5-10 mL的比例加入结合缓冲液,同时加入蛋白酶抑制剂,重悬菌体,超声裂解细胞,离心收集上清(4℃, 17000g, 10 min)。

3.免疫复合物的制备:

注意:样品所需的量和孵育时间均依赖于每个特定的抗体-抗原体系,因而可能需要优化才能得到最大产量。

以下实验方案针对 2~10 μg 亲和纯化的抗体,根据需 要可以按比例放大。

1)在离心管中,将每个样品的细胞裂解液与 2~10 μg 免疫沉淀抗体结合。每个免疫沉淀反应推荐的总蛋白量为500 ~1500 μg。

2)用IP Lysis/Wash Buffer将抗体以及制备好的样品稀释至 300~500 μL。

3)在室温下孵育 1~2 h,或 4℃ 2~4 h,以形成免疫复合物。

4. 磁珠预处理:将磁珠漩涡振荡1 min,使其充分混悬;取25-50 µL磁珠悬液置于1.5 mL EP管中。加入500 µL预冷结合缓冲液洗涤,进行磁性分离,吸弃上清,重复1次。加入200 µL结合缓冲液重悬磁珠备用。

5. 免疫沉淀 

1) 将抗原样品/抗体混合物加入装有磁珠的离心管中保持混匀室温下孵育1~2 h,或4℃ 2~4 h。

2) 上述磁珠-抗体-抗原复合物进行磁性分离,收集上清液,以备后续检测。

3) 向离心管中加入1 mL洗杂液,用移液器轻轻吹打使磁珠-抗体-抗原复合物均匀分散,然后进行磁性分离,弃上清液;从磁分离器上取下离心管,再重复洗涤两次。

6.抗原洗脱

A. 变性洗脱 此方法洗脱的样品适用于SDS-PAGE检测。

1) 从磁分离器上取下离心管,向其中加入25 μL 1×SDS-PAGE Loading Buffer 混合均匀, 95℃加热5 min。

2) 置于磁性分离器上,进行磁性分离,收集上清液进行SDS-PAGE检测。

B. 非变性洗脱

1) 向磁珠-抗体-抗原复合物中加入50 μL洗脱液,混合均匀,室温孵育5 min。

2) 置于磁性分离器上,进行磁性分离,收集洗脱液至新的 EP 管中。

3) 重复步骤 1)和2),收集洗脱液,与2)中洗脱液混合,加入中和液中和至 pH7.0-8.0。

                                                                    HB230106

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FAQ

COA

已发表文献

 

rProtein A免疫沉淀磁珠是粒径为 200nm 的纳米磁珠表面上共价偶联了大量的 Protein A 蛋白,纳米级磁珠提供的超大比表面积,具有更多的结合位点,磁珠使用量更少,非特异性吸附率低。重组 Protein A 蛋白更适合于结合 mouse IgG2a, IgG2b, IgA, rabbit IgG, 以及human IgG1, IgG2 和 IgG4。本品适用的范围广泛,可应用于细胞裂解液、细胞分泌液上清、血清、动物腹水以及其它的免疫抗原等样本的免疫沉淀(IP)和免疫共沉淀(COIP)

 

产品性质

基质(Matrix spherical)

硅基磁珠

配体(Ligand)

重组Protein A

结合能力(Binding Capacity)

0.9 mg hIgG /mL磁珠

粒径 Particle size)

200 nm

磁珠浓度(Concentration)

10mg/mL

应用(Application)

IP、COIP、CHIP、RIP等

 

运输和保存方法

冰袋运输。2-8℃长期储存,有效期2年。

 

注意事项

1.为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

2.本产品仅作科研用途!

 

使用方法

1. 缓冲液配制

平衡/结合/洗杂液:

0.15M NaCl, 20 mM Na2HPO4, pH 7.0

中和缓冲液:

1M Tris-HCl,pH 8.5

洗脱缓冲液:

0.1M 甘氨酸,pH 3.0

终止液:

50 mM Tris, pH 7.5

注:上述缓冲液为推荐的缓冲液配制,但IP实验中不同类型的抗体与抗原结合的亲和性是有区别的,抗体与抗原结合还会受到IP Lysis/Wash Buffer 的影响,因此可自行优化操作细节或者筛选及配制缓冲液进行实验。

2. 抗原样品制备

本操作说明书提供以下四种样品处理方法,建议您根据不同来源的抗原样品选择适当的方式进行预处理,使待检测抗原释放至样品溶液中。

血清样品处理:若目标蛋白丰度较高, 建议用结合缓冲液稀释血清样品至目标蛋白终浓度为10-100 µg/mL,置于冰上备用(或置于-20℃长期保存)。

悬浮细胞样品处理:离心收集细胞(4℃, 500g, 10 min),弃上清后称重,按每毫克细胞50 µL的比例用1×PBS洗涤2次;按每毫克细胞5-10 µL的比例加入结合缓冲液,同时加入蛋白酶抑制剂,混匀后置于冰上处理10 min;离心收集上清液(4℃, 14000g, 10 min),置于冰上备用(或置于-20℃长期保存)。

贴壁细胞样品处理:移去培养基,按每 1.0×105个细胞150 µL的比例用1×PBS洗涤两次;用细胞刮棒刮脱细胞,收集至1.5 mL EP管内,按每 1.0×105个细胞20-30 µL的比例加入结合缓冲液,同时加入蛋白酶抑制剂,混匀后置于冰上处理10 min;离心收集上清液(4℃, 14000g, 10 min),置于冰上备用(或置于-20℃长期保存)。

大肠杆菌样品处理 离心收集大肠杆菌(4℃, 12000g, 2 min), 弃上清后称重, 按每克(湿重)菌体10 mL的比例用1×PBS洗涤2次;按每克(湿重)菌体5-10 mL的比例加入结合缓冲液,同时加入蛋白酶抑制剂,重悬菌体,超声裂解细胞,离心收集上清(4℃, 17000g, 10 min)。

3.免疫复合物的制备:

注意:样品所需的量和孵育时间均依赖于每个特定的抗体-抗原体系,因而可能需要优化才能得到最大产量。

以下实验方案针对 2~10 μg 亲和纯化的抗体,根据需 要可以按比例放大。

1)在离心管中,将每个样品的细胞裂解液与 2~10 μg 免疫沉淀抗体结合。每个免疫沉淀反应推荐的总蛋白量为500 ~1500 μg。

2)用IP Lysis/Wash Buffer将抗体以及制备好的样品稀释至 300~500 μL。

3)在室温下孵育 1~2 h,或 4℃ 2~4 h,以形成免疫复合物。

4. 磁珠预处理:将磁珠漩涡振荡1 min,使其充分混悬;取25-50 µL磁珠悬液置于1.5 mL EP管中。加入500 µL预冷结合缓冲液洗涤,进行磁性分离,吸弃上清,重复1次。加入200 µL结合缓冲液重悬磁珠备用。

5. 免疫沉淀 

1) 将抗原样品/抗体混合物加入装有磁珠的离心管中保持混匀室温下孵育1~2 h,或4℃ 2~4 h。

2) 上述磁珠-抗体-抗原复合物进行磁性分离,收集上清液,以备后续检测。

3) 向离心管中加入1 mL洗杂液,用移液器轻轻吹打使磁珠-抗体-抗原复合物均匀分散,然后进行磁性分离,弃上清液;从磁分离器上取下离心管,再重复洗涤两次。

6.抗原洗脱

A. 变性洗脱 此方法洗脱的样品适用于SDS-PAGE检测。

1) 从磁分离器上取下离心管,向其中加入25 μL 1×SDS-PAGE Loading Buffer 混合均匀, 95℃加热5 min。

2) 置于磁性分离器上,进行磁性分离,收集上清液进行SDS-PAGE检测。

B. 非变性洗脱

1) 向磁珠-抗体-抗原复合物中加入50 μL洗脱液,混合均匀,室温孵育5 min。

2) 置于磁性分离器上,进行磁性分离,收集洗脱液至新的 EP 管中。

3) 重复步骤 1)和2),收集洗脱液,与2)中洗脱液混合,加入中和液中和至 pH7.0-8.0。

                                                                       HB230106

 

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rProtein A免疫沉淀磁珠是粒径为 200nm 的纳米磁珠表面上共价偶联了大量的 Protein A 蛋白,纳米级磁珠提供的超大比表面积,具有更多的结合位点,磁珠使用量更少,非特异性吸附率低。重组 Protein A 蛋白更适合于结合 mouse IgG2a, IgG2b, IgA, rabbit IgG, 以及human IgG1, IgG2 和 IgG4。本品适用的范围广泛,可应用于细胞裂解液、细胞分泌液上清、血清、动物腹水以及其它的免疫抗原等样本的免疫沉淀(IP)和免疫共沉淀(COIP)

 

产品性质

基质(Matrix spherical)

硅基磁珠

配体(Ligand)

重组Protein A

结合能力(Binding Capacity)

0.9 mg hIgG /mL磁珠

粒径 Particle size)

200 nm

磁珠浓度(Concentration)

10mg/mL

应用(Application)

IP、COIP、CHIP、RIP等

 

运输和保存方法

冰袋运输。2-8℃长期储存,有效期2年。

 

注意事项

1.为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

2.本产品仅作科研用途!

 

使用方法

1. 缓冲液配制

平衡/结合/洗杂液:

0.15M NaCl, 20 mM Na2HPO4, pH 7.0

中和缓冲液:

1M Tris-HCl,pH 8.5

洗脱缓冲液:

0.1M 甘氨酸,pH 3.0

终止液:

50 mM Tris, pH 7.5

注:上述缓冲液为推荐的缓冲液配制,但IP实验中不同类型的抗体与抗原结合的亲和性是有区别的,抗体与抗原结合还会受到IP Lysis/Wash Buffer 的影响,因此可自行优化操作细节或者筛选及配制缓冲液进行实验。

2. 抗原样品制备

本操作说明书提供以下四种样品处理方法,建议您根据不同来源的抗原样品选择适当的方式进行预处理,使待检测抗原释放至样品溶液中。

血清样品处理:若目标蛋白丰度较高, 建议用结合缓冲液稀释血清样品至目标蛋白终浓度为10-100 µg/mL,置于冰上备用(或置于-20℃长期保存)。

悬浮细胞样品处理:离心收集细胞(4℃, 500g, 10 min),弃上清后称重,按每毫克细胞50 µL的比例用1×PBS洗涤2次;按每毫克细胞5-10 µL的比例加入结合缓冲液,同时加入蛋白酶抑制剂,混匀后置于冰上处理10 min;离心收集上清液(4℃, 14000g, 10 min),置于冰上备用(或置于-20℃长期保存)。

贴壁细胞样品处理:移去培养基,按每 1.0×105个细胞150 µL的比例用1×PBS洗涤两次;用细胞刮棒刮脱细胞,收集至1.5 mL EP管内,按每 1.0×105个细胞20-30 µL的比例加入结合缓冲液,同时加入蛋白酶抑制剂,混匀后置于冰上处理10 min;离心收集上清液(4℃, 14000g, 10 min),置于冰上备用(或置于-20℃长期保存)。

大肠杆菌样品处理 离心收集大肠杆菌(4℃, 12000g, 2 min), 弃上清后称重, 按每克(湿重)菌体10 mL的比例用1×PBS洗涤2次;按每克(湿重)菌体5-10 mL的比例加入结合缓冲液,同时加入蛋白酶抑制剂,重悬菌体,超声裂解细胞,离心收集上清(4℃, 17000g, 10 min)。

3.免疫复合物的制备:

注意:样品所需的量和孵育时间均依赖于每个特定的抗体-抗原体系,因而可能需要优化才能得到最大产量。

以下实验方案针对 2~10 μg 亲和纯化的抗体,根据需 要可以按比例放大。

1)在离心管中,将每个样品的细胞裂解液与 2~10 μg 免疫沉淀抗体结合。每个免疫沉淀反应推荐的总蛋白量为500 ~1500 μg。

2)用IP Lysis/Wash Buffer将抗体以及制备好的样品稀释至 300~500 μL。

3)在室温下孵育 1~2 h,或 4℃ 2~4 h,以形成免疫复合物。

4. 磁珠预处理:将磁珠漩涡振荡1 min,使其充分混悬;取25-50 µL磁珠悬液置于1.5 mL EP管中。加入500 µL预冷结合缓冲液洗涤,进行磁性分离,吸弃上清,重复1次。加入200 µL结合缓冲液重悬磁珠备用。

5. 免疫沉淀 

1) 将抗原样品/抗体混合物加入装有磁珠的离心管中保持混匀室温下孵育1~2 h,或4℃ 2~4 h。

2) 上述磁珠-抗体-抗原复合物进行磁性分离,收集上清液,以备后续检测。

3) 向离心管中加入1 mL洗杂液,用移液器轻轻吹打使磁珠-抗体-抗原复合物均匀分散,然后进行磁性分离,弃上清液;从磁分离器上取下离心管,再重复洗涤两次。

6.抗原洗脱

A. 变性洗脱 此方法洗脱的样品适用于SDS-PAGE检测。

1) 从磁分离器上取下离心管,向其中加入25 μL 1×SDS-PAGE Loading Buffer 混合均匀, 95℃加热5 min。

2) 置于磁性分离器上,进行磁性分离,收集上清液进行SDS-PAGE检测。

B. 非变性洗脱

1) 向磁珠-抗体-抗原复合物中加入50 μL洗脱液,混合均匀,室温孵育5 min。

2) 置于磁性分离器上,进行磁性分离,收集洗脱液至新的 EP 管中。

3) 重复步骤 1)和2),收集洗脱液,与2)中洗脱液混合,加入中和液中和至 pH7.0-8.0。

                                                                       HB230106

 

蛋白A免疫磁珠 rProtein A MagBeads(IP Grade)

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