苯基琼脂糖FF(HS)强疏水层析预装柱5mL Phenyl FF(HS)

苯基琼脂糖FF(HS)强疏水层析预装柱5mL Phenyl FF(HS)

产品说明书

FAQ

COA

已发表文献

 

疏水作用层析(hydrophobic interaction chromatographyHIC)是利用生物分子所带有的疏水基团和固定相上的疏水配基之间的相互作用来分离物质的一种层析方法,盐离子可以破坏生物分子表面的水化膜,促进疏水基团和配基之间的结合。

Phenyl Agarose FF(HS)是一种高取代的芳香族疏水层析介质,它是 6%的琼脂糖基架上偶联苯基而成的,结合载量较高,配基疏水性强,适合疏水性较的生物分子的分离纯化。

本品Phenyl FF(HS) Chromatography Column, 5 mL是专门为快速、简便和高效分离纯化生物大分子的疏水层析预装柱。本品为装填了5 mLPhenyl Agarose FF(HS)填料的中压预装柱,该预装柱具有标准接口,可以适配商品化的各类中压色谱系统,如ÄKTA等,方便客户操作

 

产品性质

基质

6%的高度交联的琼脂糖

粒径

45165 µm

功能基团

苯基

载量

30 mg lgG 36 mg HSA/mL

建议流速

300-600 cm/h

pH范围

3-13

储存缓冲液

20%乙醇

柱子尺寸

1.6×2.5 cm5 mL

 

运输和保存方法

冰袋运输。4-30保存,有效期4年。

 

 注意事项

1)请勿冷冻保存本产品。

2填料使用前一定要充分颠倒若干次,使琼脂糖珠混合均匀。

3)为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

4本产品仅作科研用途!

 

使用方法

1 缓冲液的准备

1所用水和Buffer在使用前最好用0.22 µm0.45 µm滤膜过滤

2结合缓冲液通常选用含有高浓度盐的磷酸盐缓冲液,如20 mM PB1.5 M (NH4)2SO4pH7.0

3洗脱缓冲液通常选用不含其他盐类的磷酸盐缓冲液,如50 mM PBpH7.0对于较难洗脱的物质可以采用纯水,或者在纯水中加入低浓度乙醇作为洗脱液。

注:需要根据后续的实验结果(目的物是否有沉淀、目的物的结合强弱、回收率、分离度等) 对结合缓冲液中的盐的浓度和类型进行调整。

 

2 样品准备

样品在使用前最好用0.22 µm0.45 µm滤膜过滤,减少杂质,提高蛋白纯化效率和防止堵塞柱子。需要将样品的 pH 和电导率调整到与结合缓冲液一致

 

3 样品纯化

1)将泵管道中注满去离子水。去掉上塞子,将层析柱连接至色谱系统中。再折断下口,将预装柱接到色谱系统中,并旋紧。

2)3-5倍柱体积的去离子水冲洗出储存缓冲液,然后5倍柱体积的结合Buffer进行平衡,使填料处于与目的蛋白相同的缓冲体系下,起到保护蛋白的作用。

3)将样品加到平衡好的预装柱中,收集流出液。

4)用10-15倍柱体积的洗杂Buffer进行清洗,去除非特异性吸附的杂蛋白,收集洗杂液。

5)使用5-10倍柱体积的洗脱Buffer,收集洗脱液,即目的蛋白组分。

6)依次使用3倍柱体积的结合Buffer5倍柱体积的去离子水平衡填料,最后再用5倍柱体积的20%的乙醇平衡,然后保存在等体积的20%的乙醇中,置于4度保存,防止填料被细菌污染。

 

4 填料清洗

疏水层析填料每次使用后可以分别2-3倍柱体积的30%异丙醇(70%乙醇)3倍柱体积的纯化水冲洗层析柱,然后用至少3倍柱体积的平衡液进行平衡。

CIPCleaning In Place)清洗

疏水层析填料可以重复使用,但随着非特异性结合的蛋白的增多和蛋白的聚集,往往造成流速和结合载量都下降,这时可按照下面方法对树脂进行清洗。

1)先用2个柱体积的纯化水冲洗掉结合比较紧的蛋白。

2对于强疏水性蛋白、沉淀蛋白的去除:先用2~3个柱体积1M NaOH清洗,然后立即用5~10个柱体积纯水冲洗。

3脂蛋白和脂类物质的去除:先用5~10个柱体积的70%乙醇或30%异丙醇清洗,后用5~10个柱体积纯水冲洗。

4也可将上述两种清洗条件结合进行清洗,即用含有1M NaOH30%异丙醇溶液清洗

HB220815

苯基琼脂糖FF(HS)强疏水层析预装柱5mL Phenyl FF(HS)

暂无内容

苯基琼脂糖FF(HS)强疏水层析预装柱5mL Phenyl FF(HS)

暂无内容

 

疏水作用层析(hydrophobic interaction chromatographyHIC)是利用生物分子所带有的疏水基团和固定相上的疏水配基之间的相互作用来分离物质的一种层析方法,盐离子可以破坏生物分子表面的水化膜,促进疏水基团和配基之间的结合。

Phenyl Agarose FF(HS)是一种高取代的芳香族疏水层析介质,它是 6%的琼脂糖基架上偶联苯基而成的,结合载量较高,配基疏水性强,适合疏水性较的生物分子的分离纯化。

本品Phenyl FF(HS) Chromatography Column, 5 mL是专门为快速、简便和高效分离纯化生物大分子的疏水层析预装柱。本品为装填了5 mLPhenyl Agarose FF(HS)填料的中压预装柱,该预装柱具有标准接口,可以适配商品化的各类中压色谱系统,如ÄKTA等,方便客户操作

 

产品性质

基质

6%的高度交联的琼脂糖

粒径

45165 µm

功能基团

苯基

载量

30 mg lgG 36 mg HSA/mL

建议流速

300-600 cm/h

pH范围

3-13

储存缓冲液

20%乙醇

柱子尺寸

1.6×2.5 cm5 mL

 

运输和保存方法

冰袋运输。4-30保存,有效期4年。

 

 注意事项

1)请勿冷冻保存本产品。

2填料使用前一定要充分颠倒若干次,使琼脂糖珠混合均匀。

3)为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

4本产品仅作科研用途!

 

使用方法

1 缓冲液的准备

1所用水和Buffer在使用前最好用0.22 µm0.45 µm滤膜过滤

2结合缓冲液通常选用含有高浓度盐的磷酸盐缓冲液,如20 mM PB1.5 M (NH4)2SO4pH7.0

3洗脱缓冲液通常选用不含其他盐类的磷酸盐缓冲液,如50 mM PBpH7.0对于较难洗脱的物质可以采用纯水,或者在纯水中加入低浓度乙醇作为洗脱液。

注:需要根据后续的实验结果(目的物是否有沉淀、目的物的结合强弱、回收率、分离度等) 对结合缓冲液中的盐的浓度和类型进行调整。

 

2 样品准备

样品在使用前最好用0.22 µm0.45 µm滤膜过滤,减少杂质,提高蛋白纯化效率和防止堵塞柱子。需要将样品的 pH 和电导率调整到与结合缓冲液一致

 

3 样品纯化

1)将泵管道中注满去离子水。去掉上塞子,将层析柱连接至色谱系统中。再折断下口,将预装柱接到色谱系统中,并旋紧。

2)3-5倍柱体积的去离子水冲洗出储存缓冲液,然后5倍柱体积的结合Buffer进行平衡,使填料处于与目的蛋白相同的缓冲体系下,起到保护蛋白的作用。

3)将样品加到平衡好的预装柱中,收集流出液。

4)用10-15倍柱体积的洗杂Buffer进行清洗,去除非特异性吸附的杂蛋白,收集洗杂液。

5)使用5-10倍柱体积的洗脱Buffer,收集洗脱液,即目的蛋白组分。

6)依次使用3倍柱体积的结合Buffer5倍柱体积的去离子水平衡填料,最后再用5倍柱体积的20%的乙醇平衡,然后保存在等体积的20%的乙醇中,置于4度保存,防止填料被细菌污染。

 

4 填料清洗

疏水层析填料每次使用后可以分别2-3倍柱体积的30%异丙醇(70%乙醇)3倍柱体积的纯化水冲洗层析柱,然后用至少3倍柱体积的平衡液进行平衡。

CIPCleaning In Place)清洗

疏水层析填料可以重复使用,但随着非特异性结合的蛋白的增多和蛋白的聚集,往往造成流速和结合载量都下降,这时可按照下面方法对树脂进行清洗。

1)先用2个柱体积的纯化水冲洗掉结合比较紧的蛋白。

2对于强疏水性蛋白、沉淀蛋白的去除:先用2~3个柱体积1M NaOH清洗,然后立即用5~10个柱体积纯水冲洗。

3脂蛋白和脂类物质的去除:先用5~10个柱体积的70%乙醇或30%异丙醇清洗,后用5~10个柱体积纯水冲洗。

4也可将上述两种清洗条件结合进行清洗,即用含有1M NaOH30%异丙醇溶液清洗

HB220815

苯基琼脂糖FF(HS)强疏水层析预装柱5mL Phenyl FF(HS)

暂无内容

苯基琼脂糖FF(HS)强疏水层析预装柱5mL Phenyl FF(HS)

暂无内容

苯基琼脂糖FF(LS)|Phenyl(LS)强疏水层析介质

苯基琼脂糖FF(LS)|Phenyl(LS)强疏水层析介质

产品说明书

FAQ

COA

已发表文献

 

疏水作用层析(hydrophobic interaction chromatographyHIC)是利用生物分子所带有的疏水基团和固定相上的疏水配基之间的相互作用来分离物质的一种层析方法,盐离子可以破坏生物分子表面的水化膜,促进疏水基团和配基之间的结合。

本品Phenyl Agarose FF(LS)是一种高取代的芳香族疏水层析介质,它是 6%的琼脂糖基架上偶联苯基而成的,结合载量相对Phenyl Agarose FF(HS)较低,配基疏水性强,适合疏水性较的生物分子的分离纯化。

 

产品性质

基质

6%的高度交联的琼脂糖

粒径

45165 µm

功能基团

苯基

载量

10 mg lgG 24 mg HSA/mL

建议流速

300-600 cm/h

pH范围

3-13

储存缓冲液

20%乙醇

 

运输和保存方法

冰袋运输。4-30保存,有效期4年。

 

注意事项

1)请勿冷冻保存本产品。

2填料使用前一定要充分颠倒若干次,使琼脂糖珠混合均匀。

3)为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

4本产品仅作科研用途!

 

使用方法

1 缓冲液的准备

1所用水和Buffer在使用前最好用0.22 µm0.45 µm滤膜过滤

2结合缓冲液通常选用含有高浓度盐的磷酸盐缓冲液,如20 mM PB1.5 M (NH4)2SO4pH7.0

3洗脱缓冲液通常选用不含其他盐类的磷酸盐缓冲液,如50 mM PBpH7.0对于较难洗脱的物质可以采用纯水,或者在纯水中加入低浓度乙醇作为洗脱液。

注:需要根据后续的实验结果(目的物是否有沉淀、目的物的结合强弱、回收率、分离度等) 对结合缓冲液中的盐的浓度和类型进行调整。

 

2 样品准备

样品在使用前最好用0.22 µm0.45 µm滤膜过滤,减少杂质,提高蛋白纯化效率和防止堵塞柱子。需要将样品的 pH 和电导率调整到与结合缓冲液一致

 

3 样品纯化

1)将介质装入合适的层析柱,3-5倍柱体积的去离子水冲洗出储存缓冲液,然后5倍柱体积的结合Buffer进行平衡,使填料处于与目的蛋白相同的缓冲体系下,起到保护蛋白的作用。

2)将样品加到平衡好的Phenyl Agarose FF(LS)中,收集流出液。

3)用10-15倍柱体积的洗杂Buffer进行清洗,去除非特异性吸附的杂蛋白,收集洗杂液。

4)使用5-10倍柱体积的洗脱Buffer,收集洗脱液,即目的蛋白组分。

5)依次使用3倍柱体积的结合Buffer5倍柱体积的去离子水平衡填料,最后再用5倍柱体积的20%的乙醇平衡,然后保存在等体积的20%的乙醇中,置于4度保存,防止填料被细菌污染。

 

4 填料清洗

疏水层析填料每次使用后可以分别2-3倍柱体积的30%异丙醇(70%乙醇)3倍柱体积的纯化水冲洗层析柱,然后用至少3倍柱体积的平衡液进行平衡。

CIPCleaning In Place)清洗

疏水层析填料可以重复使用,但随着非特异性结合的蛋白的增多和蛋白的聚集,往往造成流速和结合载量都下降,这时可按照下面方法对树脂进行清洗。

1)先用2个柱体积的纯化水冲洗掉结合比较紧的蛋白。

2对于强疏水性蛋白、沉淀蛋白的去除:先用2~3个柱体积1M NaOH清洗,然后立即用5~10个柱体积纯水冲洗。

3脂蛋白和脂类物质的去除:先用5~10个柱体积的70%乙醇或30%异丙醇清洗,后用5~10个柱体积纯水冲洗。

4也可将上述两种清洗条件结合进行清洗,即用含有1M NaOH30%异丙醇溶液清洗

HB220815

 

苯基琼脂糖FF(LS)|Phenyl(LS)强疏水层析介质

暂无内容

苯基琼脂糖FF(LS)|Phenyl(LS)强疏水层析介质

暂无内容

 

疏水作用层析(hydrophobic interaction chromatographyHIC)是利用生物分子所带有的疏水基团和固定相上的疏水配基之间的相互作用来分离物质的一种层析方法,盐离子可以破坏生物分子表面的水化膜,促进疏水基团和配基之间的结合。

本品Phenyl Agarose FF(LS)是一种高取代的芳香族疏水层析介质,它是 6%的琼脂糖基架上偶联苯基而成的,结合载量相对Phenyl Agarose FF(HS)较低,配基疏水性强,适合疏水性较的生物分子的分离纯化。

 

产品性质

基质

6%的高度交联的琼脂糖

粒径

45165 µm

功能基团

苯基

载量

10 mg lgG 24 mg HSA/mL

建议流速

300-600 cm/h

pH范围

3-13

储存缓冲液

20%乙醇

 

运输和保存方法

冰袋运输。4-30保存,有效期4年。

 

注意事项

1)请勿冷冻保存本产品。

2填料使用前一定要充分颠倒若干次,使琼脂糖珠混合均匀。

3)为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

4本产品仅作科研用途!

 

使用方法

1 缓冲液的准备

1所用水和Buffer在使用前最好用0.22 µm0.45 µm滤膜过滤

2结合缓冲液通常选用含有高浓度盐的磷酸盐缓冲液,如20 mM PB1.5 M (NH4)2SO4pH7.0

3洗脱缓冲液通常选用不含其他盐类的磷酸盐缓冲液,如50 mM PBpH7.0对于较难洗脱的物质可以采用纯水,或者在纯水中加入低浓度乙醇作为洗脱液。

注:需要根据后续的实验结果(目的物是否有沉淀、目的物的结合强弱、回收率、分离度等) 对结合缓冲液中的盐的浓度和类型进行调整。

 

2 样品准备

样品在使用前最好用0.22 µm0.45 µm滤膜过滤,减少杂质,提高蛋白纯化效率和防止堵塞柱子。需要将样品的 pH 和电导率调整到与结合缓冲液一致

 

3 样品纯化

1)将介质装入合适的层析柱,3-5倍柱体积的去离子水冲洗出储存缓冲液,然后5倍柱体积的结合Buffer进行平衡,使填料处于与目的蛋白相同的缓冲体系下,起到保护蛋白的作用。

2)将样品加到平衡好的Phenyl Agarose FF(LS)中,收集流出液。

3)用10-15倍柱体积的洗杂Buffer进行清洗,去除非特异性吸附的杂蛋白,收集洗杂液。

4)使用5-10倍柱体积的洗脱Buffer,收集洗脱液,即目的蛋白组分。

5)依次使用3倍柱体积的结合Buffer5倍柱体积的去离子水平衡填料,最后再用5倍柱体积的20%的乙醇平衡,然后保存在等体积的20%的乙醇中,置于4度保存,防止填料被细菌污染。

 

4 填料清洗

疏水层析填料每次使用后可以分别2-3倍柱体积的30%异丙醇(70%乙醇)3倍柱体积的纯化水冲洗层析柱,然后用至少3倍柱体积的平衡液进行平衡。

CIPCleaning In Place)清洗

疏水层析填料可以重复使用,但随着非特异性结合的蛋白的增多和蛋白的聚集,往往造成流速和结合载量都下降,这时可按照下面方法对树脂进行清洗。

1)先用2个柱体积的纯化水冲洗掉结合比较紧的蛋白。

2对于强疏水性蛋白、沉淀蛋白的去除:先用2~3个柱体积1M NaOH清洗,然后立即用5~10个柱体积纯水冲洗。

3脂蛋白和脂类物质的去除:先用5~10个柱体积的70%乙醇或30%异丙醇清洗,后用5~10个柱体积纯水冲洗。

4也可将上述两种清洗条件结合进行清洗,即用含有1M NaOH30%异丙醇溶液清洗

HB220815

 

苯基琼脂糖FF(LS)|Phenyl(LS)强疏水层析介质

暂无内容

苯基琼脂糖FF(LS)|Phenyl(LS)强疏水层析介质

暂无内容

CM 6FF弱阳离子交换预装柱1mL

CM 6FF弱阳离子交换预装柱1mL

产品说明书

FAQ

COA

已发表文献

 

离子交换主要包括强阳离子交换、弱阳离子交换、强阴离子交换和弱阴离子交换4种,广泛用于生物制药和生物工程下游蛋白质、核酸及多肽的分离纯化。

CM弱阳离子交换层析填料FF以高度交联的6%琼脂糖为基架,可耐受较高的流速及更高的化学稳定性,适合实验室及工业大规模纯化。本品带电基团-O-CH2COO

本品CM弱阳离子交换预装柱是CM弱阳离子交换层析填料FF的中压预装柱,规格为1 mL,该预装柱具有标准接口,可以适配商品化的各类中压色谱系统,如ÄKTA等,方便客户操作。

 

产品性质

基质

高度交联的6%琼脂糖微球

粒径

45-165 µm

离子交换类型

弱阳离子

载量

~0.09-0.13 mmol H+/mL 基质

耐压

0.3 MPa

建议流速

300-600 cm/h

pH范围

4-13(长期)/ 2-14(短期)

储存缓冲液

20%乙醇

柱子尺寸

0.7×2.5 cm(1 mL)

 

运输和保存方法

冰袋运输。2-8℃保存,有效期2年。

 

使用方法

1 缓冲液的准备

应选择缓冲基团不与介质作用的缓冲盐,平衡缓冲液宜采用低盐和低 pH(通常低于目的物等电点 1 个 pH 单位)缓冲液以有利于目的物的结合,同时需要考虑目的物在缓冲液中的稳定性。洗脱缓冲液通常为在平衡缓冲液中加入高浓度盐(如 1M NaCl)的缓冲液或高 pH 洗脱。所用水和Buffer在使用前最好用0.22 µm或0.45 µm滤膜过滤。

表1:阳离子交换缓冲液

pH 范围

缓冲盐

浓度(mM)

平衡离子

pKa(25℃)

1.4-2.4

Maleic acid

20

Na+

1.92

2.6-3.6

Methyl malonic acid

20

Na+或 Li+

3.07

2.6-3.6

Citric acid

20

Na+

3.13

3.3-4.3

Lactic acid

50

Na+

3.86

3.3-4.3

Formic acid

50

Na+或 Li+

3.75

3.7-4.7

Succinic acid

50

Na+

4.21

4.3-5.3

Acetic acid

50

Na+或 Li+

4.75

5.1-6.1

Succinic acid

50

Na+

5.64

5.2-6.2

Methyl malonic acid

50

Na+或 Li+

5.76

5.6-6.6

MJP

50

Na+或 Li+

6.27

6.7-7.7

PhoCMhate

50

Na+

7.20

7.0-8.0

HEPJP

50

Na+或 Li+

7.56

7.8-8.8

BICINE

50

Cl

8.33

 

2 样品准备

样品在使用前最好用0.22 µm或0.45 µm滤膜过滤,减少杂质,提高蛋白纯化效率和防止堵塞柱子。

3 样品纯化

1)将泵管道中注满去离子水。去掉上塞子,将层析柱连接至色谱系统中。再折断下口,将预装柱接到色谱系统中,并旋紧。

2)用3-5倍柱体积的去离子水冲洗出存储缓冲液。

3)使用至少5倍柱床体积的结合Buffer平衡色谱柱。

4)利用泵或注射器上样。

【注】样品的粘度增加使得即使上样体积很少也会导致层析柱很大的反压。上样量不要超过柱子的结合能力。大量的样品体积也可能造成很大的反压,使得进样器更难使用。

5)用洗杂Buffer冲洗柱子,直到紫外吸收达到一个稳定的基线(一般至少10-15个柱体积)。

6)用洗脱Buffer采用一步法或线性梯度洗脱。一步洗脱中,通常5倍柱体积洗脱液就足够了。可以用一个小的梯度,例如20倍柱体积或更多,来分离不同结合强度的蛋白质。

5 填料清洗

离子交换填料每次使用后可以用1M NaCl甚至更高离子强度溶液或高pH溶液清洗,然后用至少5倍柱体积的Buffer进行平衡至离子强度或pH值稳定。

CIP(Cleaning In Place)清洗

离子交换填料可以重复使用而无需再生,但随着非特异性结合的蛋白的增多和蛋白的聚集,往往造成流速和结合载量都下降,这时可按照下面方法对填料进行清洗。

1)去除一些沉淀或变性物质

用2倍柱体积的1 M NaOH溶液进行清洗,然后立即用5倍柱体积的PBS, pH7.4清洗。

2)去除一些疏水性吸附造成的非特异性吸附物质

用3-4倍柱体积的70%乙醇或3-4倍柱体积的1% Triton™ X-100清洗,然后立即用5倍柱体积的PBS, pH7.4清洗。

3)去除一些离子键结合物质

用3-4倍柱体积的2 M NaCl清洗,然后立即用5倍柱体积的PBS, pH 7.4清洗。

 

注意事项

1)请勿冷冻保存本产品。

2)为了得到良好的分离效果,避免缓冲液与层析柱有太大温差变化。

3)层析柱可以放在层析冷柜中使用,但是需要适当降低流速。

4)为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

5本产品仅作科研用途!

 

附表 问题及解决方案

问题

可能原因

推荐解决方案

柱子反压过高

填料被堵塞

按照【填料清洗】部分对填料进行清洗。

样品中含有微小的固体颗粒,建议使用前用0.22 µm或0.45   µm滤膜过滤。

洗脱样品较杂

填料重复多次使用

按照【填料清洗】部分对填料进行清洗或更换新填料。

平衡不充分

增加平衡液体积,确保填料充分平衡/洗杂。

 

HB220708

 

CM 6FF弱阳离子交换预装柱1mL

暂无内容

CM 6FF弱阳离子交换预装柱1mL

暂无内容

 

离子交换主要包括强阳离子交换、弱阳离子交换、强阴离子交换和弱阴离子交换4种,广泛用于生物制药和生物工程下游蛋白质、核酸及多肽的分离纯化。

CM弱阳离子交换层析填料FF以高度交联的6%琼脂糖为基架,可耐受较高的流速及更高的化学稳定性,适合实验室及工业大规模纯化。本品带电基团-O-CH2COO

本品CM弱阳离子交换预装柱是CM弱阳离子交换层析填料FF的中压预装柱,规格为1 mL,该预装柱具有标准接口,可以适配商品化的各类中压色谱系统,如ÄKTA等,方便客户操作。

 

产品性质

基质

高度交联的6%琼脂糖微球

粒径

45-165 µm

离子交换类型

弱阳离子

载量

~0.09-0.13 mmol H+/mL 基质

耐压

0.3 MPa

建议流速

300-600 cm/h

pH范围

4-13(长期)/ 2-14(短期)

储存缓冲液

20%乙醇

柱子尺寸

0.7×2.5 cm(1 mL)

 

运输和保存方法

冰袋运输。2-8℃保存,有效期2年。

 

使用方法

1 缓冲液的准备

应选择缓冲基团不与介质作用的缓冲盐,平衡缓冲液宜采用低盐和低 pH(通常低于目的物等电点 1 个 pH 单位)缓冲液以有利于目的物的结合,同时需要考虑目的物在缓冲液中的稳定性。洗脱缓冲液通常为在平衡缓冲液中加入高浓度盐(如 1M NaCl)的缓冲液或高 pH 洗脱。所用水和Buffer在使用前最好用0.22 µm或0.45 µm滤膜过滤。

表1:阳离子交换缓冲液

pH 范围

缓冲盐

浓度(mM)

平衡离子

pKa(25℃)

1.4-2.4

Maleic acid

20

Na+

1.92

2.6-3.6

Methyl malonic acid

20

Na+或 Li+

3.07

2.6-3.6

Citric acid

20

Na+

3.13

3.3-4.3

Lactic acid

50

Na+

3.86

3.3-4.3

Formic acid

50

Na+或 Li+

3.75

3.7-4.7

Succinic acid

50

Na+

4.21

4.3-5.3

Acetic acid

50

Na+或 Li+

4.75

5.1-6.1

Succinic acid

50

Na+

5.64

5.2-6.2

Methyl malonic acid

50

Na+或 Li+

5.76

5.6-6.6

MJP

50

Na+或 Li+

6.27

6.7-7.7

PhoCMhate

50

Na+

7.20

7.0-8.0

HEPJP

50

Na+或 Li+

7.56

7.8-8.8

BICINE

50

Cl

8.33

 

2 样品准备

样品在使用前最好用0.22 µm或0.45 µm滤膜过滤,减少杂质,提高蛋白纯化效率和防止堵塞柱子。

3 样品纯化

1)将泵管道中注满去离子水。去掉上塞子,将层析柱连接至色谱系统中。再折断下口,将预装柱接到色谱系统中,并旋紧。

2)用3-5倍柱体积的去离子水冲洗出存储缓冲液。

3)使用至少5倍柱床体积的结合Buffer平衡色谱柱。

4)利用泵或注射器上样。

【注】样品的粘度增加使得即使上样体积很少也会导致层析柱很大的反压。上样量不要超过柱子的结合能力。大量的样品体积也可能造成很大的反压,使得进样器更难使用。

5)用洗杂Buffer冲洗柱子,直到紫外吸收达到一个稳定的基线(一般至少10-15个柱体积)。

6)用洗脱Buffer采用一步法或线性梯度洗脱。一步洗脱中,通常5倍柱体积洗脱液就足够了。可以用一个小的梯度,例如20倍柱体积或更多,来分离不同结合强度的蛋白质。

5 填料清洗

离子交换填料每次使用后可以用1M NaCl甚至更高离子强度溶液或高pH溶液清洗,然后用至少5倍柱体积的Buffer进行平衡至离子强度或pH值稳定。

CIP(Cleaning In Place)清洗

离子交换填料可以重复使用而无需再生,但随着非特异性结合的蛋白的增多和蛋白的聚集,往往造成流速和结合载量都下降,这时可按照下面方法对填料进行清洗。

1)去除一些沉淀或变性物质

用2倍柱体积的1 M NaOH溶液进行清洗,然后立即用5倍柱体积的PBS, pH7.4清洗。

2)去除一些疏水性吸附造成的非特异性吸附物质

用3-4倍柱体积的70%乙醇或3-4倍柱体积的1% Triton™ X-100清洗,然后立即用5倍柱体积的PBS, pH7.4清洗。

3)去除一些离子键结合物质

用3-4倍柱体积的2 M NaCl清洗,然后立即用5倍柱体积的PBS, pH 7.4清洗。

 

注意事项

1)请勿冷冻保存本产品。

2)为了得到良好的分离效果,避免缓冲液与层析柱有太大温差变化。

3)层析柱可以放在层析冷柜中使用,但是需要适当降低流速。

4)为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

5本产品仅作科研用途!

 

附表 问题及解决方案

问题

可能原因

推荐解决方案

柱子反压过高

填料被堵塞

按照【填料清洗】部分对填料进行清洗。

样品中含有微小的固体颗粒,建议使用前用0.22 µm或0.45   µm滤膜过滤。

洗脱样品较杂

填料重复多次使用

按照【填料清洗】部分对填料进行清洗或更换新填料。

平衡不充分

增加平衡液体积,确保填料充分平衡/洗杂。

 

HB220708

 

CM 6FF弱阳离子交换预装柱1mL

暂无内容

CM 6FF弱阳离子交换预装柱1mL

暂无内容

苯基琼脂糖FF(HS)|Phenyl(HS)强疏水层析介质

苯基琼脂糖FF(HS)|Phenyl(HS)强疏水层析介质

产品说明书

FAQ

COA

已发表文献

 

疏水作用层析(hydrophobic interaction chromatographyHIC)是利用生物分子所带有的疏水基团和固定相上的疏水配基之间的相互作用来分离物质的一种层析方法,盐离子可以破坏生物分子表面的水化膜,促进疏水基团和配基之间的结合。

本品Phenyl Agarose FF(HS)是一种高取代的芳香族疏水层析介质,它是 6%的琼脂糖基架上偶联苯基而成的,结合载量较高,配基疏水性强,适合疏水性较的生物分子的分离纯化。

 

产品性质

基质

6%的高度交联的琼脂糖

粒径

45-165 µm

功能基团

苯基

载量

30 mg lgG 36 mg HSA/mL

建议流速

300-600 cm/h

pH范围

3-13

储存缓冲液

20%乙醇

 

运输和保存方法

冰袋运输。4-30保存,有效期4年。

 

注意事项

1)请勿冷冻保存本产品。

2填料使用前一定要充分颠倒若干次,使琼脂糖珠混合均匀。

3)为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

4本产品仅作科研用途!

 

使用方法

1 缓冲液的准备

1所用水和Buffer在使用前最好用0.22 µm0.45 µm滤膜过滤

2)结合缓冲液通常选用含有高浓度盐的磷酸盐缓冲液,如20 mM PB1.5 M (NH4)2SO4pH7.0

3)洗脱缓冲液通常选用不含其他盐类的磷酸盐缓冲液,如50 mM PBpH7.0,对于较难洗脱的物质可以采用纯水,或者在纯水中加入低浓度乙醇作为洗脱液。

注:需要根据后续的实验结果(目的物是否有沉淀、目的物的结合强弱、回收率、分离度等) 对结合缓冲液中的盐的浓度和类型进行调整。

 

2 样品准备

样品在使用前最好用0.22 µm0.45 µm滤膜过滤,减少杂质,提高蛋白纯化效率和防止堵塞柱子。需要将样品的 pH 和电导率调整到与结合缓冲液一致。

 

3 样品纯化

1)将介质装入合适的层析柱,3-5倍柱体积的去离子水冲洗出储存缓冲液,然后5倍柱体积的结合Buffer进行平衡,使填料处于与目的蛋白相同的缓冲体系下,起到保护蛋白的作用。

2)将样品加到平衡好的Phenyl Agarose FF(HS)中,收集流出液。

3)用10-15倍柱体积的洗杂Buffer进行清洗,去除非特异性吸附的杂蛋白,收集洗杂液。

4)使用5-10倍柱体积的洗脱Buffer,收集洗脱液,即目的蛋白组分。

5)依次使用3倍柱体积的结合Buffer5倍柱体积的去离子水平衡填料,最后再用5倍柱体积的20%的乙醇平衡,然后保存在等体积的20%的乙醇中,置于4度保存,防止填料被细菌污染。

 

4 填料清洗

疏水层析填料每次使用后可以分别2-3倍柱体积的30%异丙醇(70%乙醇)、3倍柱体积的纯化水冲洗层析柱,然后用至少3倍柱体积的平衡液进行平衡。

CIPCleaning In Place)清洗

疏水层析填料可以重复使用,但随着非特异性结合的蛋白的增多和蛋白的聚集,往往造成流速和结合载量都下降,这时可按照下面方法对树脂进行清洗。

1)先用2个柱体积的纯化水冲洗掉结合比较紧的蛋白。

2)对于强疏水性蛋白、沉淀蛋白的去除:先用2~3个柱体积1M NaOH清洗,然后立即用5~10个柱体积纯水冲洗。

3)脂蛋白和脂类物质的去除:先用5~10个柱体积的70%乙醇或30%异丙醇清洗,后用5~10个柱体积纯水冲洗。

4)也可将上述两种清洗条件结合进行清洗,即用含有1M NaOH30%异丙醇溶液清洗。

HB220815

苯基琼脂糖FF(HS)|Phenyl(HS)强疏水层析介质

暂无内容

苯基琼脂糖FF(HS)|Phenyl(HS)强疏水层析介质

暂无内容

 

疏水作用层析(hydrophobic interaction chromatographyHIC)是利用生物分子所带有的疏水基团和固定相上的疏水配基之间的相互作用来分离物质的一种层析方法,盐离子可以破坏生物分子表面的水化膜,促进疏水基团和配基之间的结合。

本品Phenyl Agarose FF(HS)是一种高取代的芳香族疏水层析介质,它是 6%的琼脂糖基架上偶联苯基而成的,结合载量较高,配基疏水性强,适合疏水性较的生物分子的分离纯化。

 

产品性质

基质

6%的高度交联的琼脂糖

粒径

45-165 µm

功能基团

苯基

载量

30 mg lgG 36 mg HSA/mL

建议流速

300-600 cm/h

pH范围

3-13

储存缓冲液

20%乙醇

 

运输和保存方法

冰袋运输。4-30保存,有效期4年。

 

注意事项

1)请勿冷冻保存本产品。

2填料使用前一定要充分颠倒若干次,使琼脂糖珠混合均匀。

3)为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

4本产品仅作科研用途!

 

使用方法

1 缓冲液的准备

1所用水和Buffer在使用前最好用0.22 µm0.45 µm滤膜过滤

2)结合缓冲液通常选用含有高浓度盐的磷酸盐缓冲液,如20 mM PB1.5 M (NH4)2SO4pH7.0

3)洗脱缓冲液通常选用不含其他盐类的磷酸盐缓冲液,如50 mM PBpH7.0,对于较难洗脱的物质可以采用纯水,或者在纯水中加入低浓度乙醇作为洗脱液。

注:需要根据后续的实验结果(目的物是否有沉淀、目的物的结合强弱、回收率、分离度等) 对结合缓冲液中的盐的浓度和类型进行调整。

 

2 样品准备

样品在使用前最好用0.22 µm0.45 µm滤膜过滤,减少杂质,提高蛋白纯化效率和防止堵塞柱子。需要将样品的 pH 和电导率调整到与结合缓冲液一致。

 

3 样品纯化

1)将介质装入合适的层析柱,3-5倍柱体积的去离子水冲洗出储存缓冲液,然后5倍柱体积的结合Buffer进行平衡,使填料处于与目的蛋白相同的缓冲体系下,起到保护蛋白的作用。

2)将样品加到平衡好的Phenyl Agarose FF(HS)中,收集流出液。

3)用10-15倍柱体积的洗杂Buffer进行清洗,去除非特异性吸附的杂蛋白,收集洗杂液。

4)使用5-10倍柱体积的洗脱Buffer,收集洗脱液,即目的蛋白组分。

5)依次使用3倍柱体积的结合Buffer5倍柱体积的去离子水平衡填料,最后再用5倍柱体积的20%的乙醇平衡,然后保存在等体积的20%的乙醇中,置于4度保存,防止填料被细菌污染。

 

4 填料清洗

疏水层析填料每次使用后可以分别2-3倍柱体积的30%异丙醇(70%乙醇)、3倍柱体积的纯化水冲洗层析柱,然后用至少3倍柱体积的平衡液进行平衡。

CIPCleaning In Place)清洗

疏水层析填料可以重复使用,但随着非特异性结合的蛋白的增多和蛋白的聚集,往往造成流速和结合载量都下降,这时可按照下面方法对树脂进行清洗。

1)先用2个柱体积的纯化水冲洗掉结合比较紧的蛋白。

2)对于强疏水性蛋白、沉淀蛋白的去除:先用2~3个柱体积1M NaOH清洗,然后立即用5~10个柱体积纯水冲洗。

3)脂蛋白和脂类物质的去除:先用5~10个柱体积的70%乙醇或30%异丙醇清洗,后用5~10个柱体积纯水冲洗。

4)也可将上述两种清洗条件结合进行清洗,即用含有1M NaOH30%异丙醇溶液清洗。

HB220815

苯基琼脂糖FF(HS)|Phenyl(HS)强疏水层析介质

暂无内容

苯基琼脂糖FF(HS)|Phenyl(HS)强疏水层析介质

暂无内容

苯基琼脂糖FF(LS)强疏水层析预装柱5mL Phenyl FF(LS)

苯基琼脂糖FF(LS)强疏水层析预装柱5mL Phenyl FF(LS)

产品说明书

FAQ

COA

已发表文献

 

疏水作用层析(hydrophobic interaction chromatography,HIC)是利用生物分子所带有的疏水基团和固定相上的疏水配基之间的相互作用来分离物质的一种层析方法,盐离子可以破坏生物分子表面的水化膜,促进疏水基团和配基之间的结合。

Phenyl Agarose FF(LS)是一种高取代的芳香族疏水层析介质,它是 6%的琼脂糖基架上偶联苯基而成的,结合载量相对Phenyl Agarose FF(HS)较低,配基疏水性强,适合疏水性较的生物分子的分离纯化。

本品Phenyl FF(LS) Chromatography Column, 5 mL是专门为快速、简便和高效分离纯化生物大分子的疏水层析预装柱。本品为装填了5 mL的Phenyl Agarose FF(LS)填料的中压预装柱,该预装柱具有标准接口,可以适配商品化的各类中压色谱系统,如ÄKTA等,方便客户操作

 

产品性质

基质

6%的高度交联的琼脂糖

粒径

45-165 µm

功能基团

苯基

载量

10 mg lgG 或 24 mg HSA/mL

建议流速

300-600 cm/h

pH范围

3-13

储存缓冲液

20%乙醇

柱子尺寸

1.6×2.5 cm(5 mL

 

运输和保存方法

冰袋运输。4-30℃保存,有效期4年。

 

注意事项

1)请勿冷冻保存本产品。

2)填料使用前一定要充分颠倒若干次,使琼脂糖珠混合均匀。

3)为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

4本产品仅作科研用途!

 

使用方法

1 缓冲液的准备

1)所用水和Buffer在使用前最好用0.22 µm或0.45 µm滤膜过滤

2)结合缓冲液通常选用含有高浓度盐的磷酸盐缓冲液,如20 mM PB,1.5 M (NH4)2SO4pH7.0。

3)洗脱缓冲液通常选用不含其他盐类的磷酸盐缓冲液,如50 mM PB,pH7.0,对于较难洗脱的物质可以采用纯水,或者在纯水中加入低浓度乙醇作为洗脱液。

注:需要根据后续的实验结果(目的物是否有沉淀、目的物的结合强弱、回收率、分离度等) 对结合缓冲液中的盐的浓度和类型进行调整。

 

2 样品准备

样品在使用前最好用0.22 µm或0.45 µm滤膜过滤,减少杂质,提高蛋白纯化效率和防止堵塞柱子。需要将样品的 pH 和电导率调整到与结合缓冲液一致。

 

3 样品纯化

1)将泵管道中注满去离子水。去掉上塞子,将层析柱连接至色谱系统中。再折断下口,将预装柱接到色谱系统中,并旋紧。

2)3-5倍柱体积的去离子水冲洗出储存缓冲液,然后5倍柱体积的结合Buffer进行平衡,使填料处于与目的蛋白相同的缓冲体系下,起到保护蛋白的作用。

3)将样品加到平衡好的预装柱中,收集流出液。

4)用10-15倍柱体积的洗杂Buffer进行清洗,去除非特异性吸附的杂蛋白,收集洗杂液。

5)使用5-10倍柱体积的洗脱Buffer,收集洗脱液,即目的蛋白组分。

6)依次使用3倍柱体积的结合Buffer和5倍柱体积的去离子水平衡填料,最后再用5倍柱体积的20%的乙醇平衡,然后保存在等体积的20%的乙醇中,置于4度保存,防止填料被细菌污染。

 

4 填料清洗

疏水层析填料每次使用后可以分别2-3倍柱体积的30%异丙醇(70%乙醇)、3倍柱体积的纯化水冲洗层析柱,然后用至少3倍柱体积的平衡液进行平衡。

CIP(Cleaning In Place)清洗

疏水层析填料可以重复使用,但随着非特异性结合的蛋白的增多和蛋白的聚集,往往造成流速和结合载量都下降,这时可按照下面方法对树脂进行清洗。

1)先用2个柱体积的纯化水冲洗掉结合比较紧的蛋白。

2)对于强疏水性蛋白、沉淀蛋白的去除:先用2~3个柱体积1M NaOH清洗,然后立即用5~10个柱体积纯水冲洗。

3)脂蛋白和脂类物质的去除:先用5~10个柱体积的70%乙醇或30%异丙醇清洗,后用5~10个柱体积纯水冲洗。

4)也可将上述两种清洗条件结合进行清洗,即用含有1M NaOH的30%异丙醇溶液清洗。

HB220815

 

苯基琼脂糖FF(LS)强疏水层析预装柱5mL Phenyl FF(LS)

暂无内容

苯基琼脂糖FF(LS)强疏水层析预装柱5mL Phenyl FF(LS)

暂无内容

 

疏水作用层析(hydrophobic interaction chromatography,HIC)是利用生物分子所带有的疏水基团和固定相上的疏水配基之间的相互作用来分离物质的一种层析方法,盐离子可以破坏生物分子表面的水化膜,促进疏水基团和配基之间的结合。

Phenyl Agarose FF(LS)是一种高取代的芳香族疏水层析介质,它是 6%的琼脂糖基架上偶联苯基而成的,结合载量相对Phenyl Agarose FF(HS)较低,配基疏水性强,适合疏水性较的生物分子的分离纯化。

本品Phenyl FF(LS) Chromatography Column, 5 mL是专门为快速、简便和高效分离纯化生物大分子的疏水层析预装柱。本品为装填了5 mL的Phenyl Agarose FF(LS)填料的中压预装柱,该预装柱具有标准接口,可以适配商品化的各类中压色谱系统,如ÄKTA等,方便客户操作

 

产品性质

基质

6%的高度交联的琼脂糖

粒径

45-165 µm

功能基团

苯基

载量

10 mg lgG 或 24 mg HSA/mL

建议流速

300-600 cm/h

pH范围

3-13

储存缓冲液

20%乙醇

柱子尺寸

1.6×2.5 cm(5 mL

 

运输和保存方法

冰袋运输。4-30℃保存,有效期4年。

 

注意事项

1)请勿冷冻保存本产品。

2)填料使用前一定要充分颠倒若干次,使琼脂糖珠混合均匀。

3)为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

4本产品仅作科研用途!

 

使用方法

1 缓冲液的准备

1)所用水和Buffer在使用前最好用0.22 µm或0.45 µm滤膜过滤

2)结合缓冲液通常选用含有高浓度盐的磷酸盐缓冲液,如20 mM PB,1.5 M (NH4)2SO4pH7.0。

3)洗脱缓冲液通常选用不含其他盐类的磷酸盐缓冲液,如50 mM PB,pH7.0,对于较难洗脱的物质可以采用纯水,或者在纯水中加入低浓度乙醇作为洗脱液。

注:需要根据后续的实验结果(目的物是否有沉淀、目的物的结合强弱、回收率、分离度等) 对结合缓冲液中的盐的浓度和类型进行调整。

 

2 样品准备

样品在使用前最好用0.22 µm或0.45 µm滤膜过滤,减少杂质,提高蛋白纯化效率和防止堵塞柱子。需要将样品的 pH 和电导率调整到与结合缓冲液一致。

 

3 样品纯化

1)将泵管道中注满去离子水。去掉上塞子,将层析柱连接至色谱系统中。再折断下口,将预装柱接到色谱系统中,并旋紧。

2)3-5倍柱体积的去离子水冲洗出储存缓冲液,然后5倍柱体积的结合Buffer进行平衡,使填料处于与目的蛋白相同的缓冲体系下,起到保护蛋白的作用。

3)将样品加到平衡好的预装柱中,收集流出液。

4)用10-15倍柱体积的洗杂Buffer进行清洗,去除非特异性吸附的杂蛋白,收集洗杂液。

5)使用5-10倍柱体积的洗脱Buffer,收集洗脱液,即目的蛋白组分。

6)依次使用3倍柱体积的结合Buffer和5倍柱体积的去离子水平衡填料,最后再用5倍柱体积的20%的乙醇平衡,然后保存在等体积的20%的乙醇中,置于4度保存,防止填料被细菌污染。

 

4 填料清洗

疏水层析填料每次使用后可以分别2-3倍柱体积的30%异丙醇(70%乙醇)、3倍柱体积的纯化水冲洗层析柱,然后用至少3倍柱体积的平衡液进行平衡。

CIP(Cleaning In Place)清洗

疏水层析填料可以重复使用,但随着非特异性结合的蛋白的增多和蛋白的聚集,往往造成流速和结合载量都下降,这时可按照下面方法对树脂进行清洗。

1)先用2个柱体积的纯化水冲洗掉结合比较紧的蛋白。

2)对于强疏水性蛋白、沉淀蛋白的去除:先用2~3个柱体积1M NaOH清洗,然后立即用5~10个柱体积纯水冲洗。

3)脂蛋白和脂类物质的去除:先用5~10个柱体积的70%乙醇或30%异丙醇清洗,后用5~10个柱体积纯水冲洗。

4)也可将上述两种清洗条件结合进行清洗,即用含有1M NaOH的30%异丙醇溶液清洗。

HB220815

 

苯基琼脂糖FF(LS)强疏水层析预装柱5mL Phenyl FF(LS)

暂无内容

苯基琼脂糖FF(LS)强疏水层析预装柱5mL Phenyl FF(LS)

暂无内容

丁基琼脂糖4FF弱疏水层析预装柱5mL Butyl 4FF

丁基琼脂糖4FF弱疏水层析预装柱5mL Butyl 4FF

产品说明书

FAQ

COA

已发表文献

 

疏水作用层析(hydrophobic interaction chromatographyHIC)是利用生物分子所带有的疏水基团和固定相上的疏水配基之间的相互作用来分离物质的一种层析方法,盐离子可以破坏生物分子表面的水化膜,促进疏水基团和配基之间的结合。

Butyl Agarose 4FF 4%的琼脂糖基架上偶联丁基脂肪链而成的,配基疏水性弱,优化后的配基密度适合疏水性较强的生物分子的分离纯化。

本品Butyl 4FF Chromatography Column是专门为快速、简便和高效分离纯化生物大分子的疏水层析预装柱。本品为装填了5 mLButyl Agarose 4FF填料的中压预装柱,该预装柱具有标准接口,可以适配商品化的各类中压色谱系统,如ÄKTA等,方便客户操作

 

产品性质

基质

4%的高度交联的琼脂糖

粒径

45165 µm

功能基团

-CH2-CH2-CH2-CH3(丁基)

载量

7 mg lgG 26 mg HSA/mL

建议流速

300 cm/h

pH范围

3-13

储存缓冲液

20%乙醇

柱子尺寸

1.6×2.5 cm5 mL

 

运输和保存方法

冰袋运输。4-30保存,有效期4年。

 

注意事项

1)请勿冷冻保存本产品。

2填料使用前一定要充分颠倒若干次,使琼脂糖珠混合均匀。

3)为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

4本产品仅作科研用途!

 

使用方法

1 缓冲液的准备

1所用水和Buffer在使用前最好用0.22 µm0.45 µm滤膜过滤

2结合缓冲液通常选用含有高浓度盐的磷酸盐缓冲液,如20 mM PB1.5 M (NH4)2SO4pH7.0

3洗脱缓冲液通常选用不含其他盐类的磷酸盐缓冲液,如50 mM PBpH7.0对于较难洗脱的物质可以采用纯水,或者在纯水中加入低浓度乙醇作为洗脱液。

注:需要根据后续的实验结果(目的物是否有沉淀、目的物的结合强弱、回收率、分离度等) 对结合缓冲液中的盐的浓度和类型进行调整。

 

2 样品准备

样品在使用前最好用0.22 µm0.45 µm滤膜过滤,减少杂质,提高蛋白纯化效率和防止堵塞柱子。需要将样品的 pH 和电导率调整到与结合缓冲液一致

 

3 样品纯化

1)将泵管道中注满去离子水。去掉上塞子,将层析柱连接至色谱系统中。再折断下口,将预装柱接到色谱系统中,并旋紧。

2)3-5倍柱体积的去离子水冲洗出储存缓冲液,然后5倍柱体积的结合Buffer进行平衡,使填料处于与目的蛋白相同的缓冲体系下,起到保护蛋白的作用。

3)将样品加到平衡好的预装柱中,收集流出液。

4)用10-15倍柱体积的洗杂Buffer进行清洗,去除非特异性吸附的杂蛋白,收集洗杂液。

5)使用5-10倍柱体积的洗脱Buffer,收集洗脱液,即目的蛋白组分。

6)依次使用3倍柱体积的结合Buffer5倍柱体积的去离子水平衡填料,最后再用5倍柱体积的20%的乙醇平衡,然后保存在等体积的20%的乙醇中,置于4度保存,防止填料被细菌污染。

 

4 填料清洗

疏水层析填料每次使用后可以分别2-3倍柱体积的30%异丙醇(70%乙醇)3倍柱体积的纯化水冲洗层析柱,然后用至少3倍柱体积的平衡液进行平衡。

CIPCleaning In Place)清洗

疏水层析填料可以重复使用,但随着非特异性结合的蛋白的增多和蛋白的聚集,往往造成流速和结合载量都下降,这时可按照下面方法对树脂进行清洗。

1)先用2个柱体积的纯化水冲洗掉结合比较紧的蛋白。

2对于强疏水性蛋白、沉淀蛋白的去除:先用2~3个柱体积1M NaOH清洗,然后立即用5~10个柱体积纯水冲洗。

3脂蛋白和脂类物质的去除:先用5~10个柱体积的70%乙醇或30%异丙醇清洗,后用5~10个柱体积纯水冲洗。

4也可将上述两种清洗条件结合进行清洗,即用含有1M NaOH30%异丙醇溶液清洗

HB220815

丁基琼脂糖4FF弱疏水层析预装柱5mL Butyl 4FF

暂无内容

丁基琼脂糖4FF弱疏水层析预装柱5mL Butyl 4FF

暂无内容

 

疏水作用层析(hydrophobic interaction chromatographyHIC)是利用生物分子所带有的疏水基团和固定相上的疏水配基之间的相互作用来分离物质的一种层析方法,盐离子可以破坏生物分子表面的水化膜,促进疏水基团和配基之间的结合。

Butyl Agarose 4FF 4%的琼脂糖基架上偶联丁基脂肪链而成的,配基疏水性弱,优化后的配基密度适合疏水性较强的生物分子的分离纯化。

本品Butyl 4FF Chromatography Column是专门为快速、简便和高效分离纯化生物大分子的疏水层析预装柱。本品为装填了5 mLButyl Agarose 4FF填料的中压预装柱,该预装柱具有标准接口,可以适配商品化的各类中压色谱系统,如ÄKTA等,方便客户操作

 

产品性质

基质

4%的高度交联的琼脂糖

粒径

45165 µm

功能基团

-CH2-CH2-CH2-CH3(丁基)

载量

7 mg lgG 26 mg HSA/mL

建议流速

300 cm/h

pH范围

3-13

储存缓冲液

20%乙醇

柱子尺寸

1.6×2.5 cm5 mL

 

运输和保存方法

冰袋运输。4-30保存,有效期4年。

 

注意事项

1)请勿冷冻保存本产品。

2填料使用前一定要充分颠倒若干次,使琼脂糖珠混合均匀。

3)为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

4本产品仅作科研用途!

 

使用方法

1 缓冲液的准备

1所用水和Buffer在使用前最好用0.22 µm0.45 µm滤膜过滤

2结合缓冲液通常选用含有高浓度盐的磷酸盐缓冲液,如20 mM PB1.5 M (NH4)2SO4pH7.0

3洗脱缓冲液通常选用不含其他盐类的磷酸盐缓冲液,如50 mM PBpH7.0对于较难洗脱的物质可以采用纯水,或者在纯水中加入低浓度乙醇作为洗脱液。

注:需要根据后续的实验结果(目的物是否有沉淀、目的物的结合强弱、回收率、分离度等) 对结合缓冲液中的盐的浓度和类型进行调整。

 

2 样品准备

样品在使用前最好用0.22 µm0.45 µm滤膜过滤,减少杂质,提高蛋白纯化效率和防止堵塞柱子。需要将样品的 pH 和电导率调整到与结合缓冲液一致

 

3 样品纯化

1)将泵管道中注满去离子水。去掉上塞子,将层析柱连接至色谱系统中。再折断下口,将预装柱接到色谱系统中,并旋紧。

2)3-5倍柱体积的去离子水冲洗出储存缓冲液,然后5倍柱体积的结合Buffer进行平衡,使填料处于与目的蛋白相同的缓冲体系下,起到保护蛋白的作用。

3)将样品加到平衡好的预装柱中,收集流出液。

4)用10-15倍柱体积的洗杂Buffer进行清洗,去除非特异性吸附的杂蛋白,收集洗杂液。

5)使用5-10倍柱体积的洗脱Buffer,收集洗脱液,即目的蛋白组分。

6)依次使用3倍柱体积的结合Buffer5倍柱体积的去离子水平衡填料,最后再用5倍柱体积的20%的乙醇平衡,然后保存在等体积的20%的乙醇中,置于4度保存,防止填料被细菌污染。

 

4 填料清洗

疏水层析填料每次使用后可以分别2-3倍柱体积的30%异丙醇(70%乙醇)3倍柱体积的纯化水冲洗层析柱,然后用至少3倍柱体积的平衡液进行平衡。

CIPCleaning In Place)清洗

疏水层析填料可以重复使用,但随着非特异性结合的蛋白的增多和蛋白的聚集,往往造成流速和结合载量都下降,这时可按照下面方法对树脂进行清洗。

1)先用2个柱体积的纯化水冲洗掉结合比较紧的蛋白。

2对于强疏水性蛋白、沉淀蛋白的去除:先用2~3个柱体积1M NaOH清洗,然后立即用5~10个柱体积纯水冲洗。

3脂蛋白和脂类物质的去除:先用5~10个柱体积的70%乙醇或30%异丙醇清洗,后用5~10个柱体积纯水冲洗。

4也可将上述两种清洗条件结合进行清洗,即用含有1M NaOH30%异丙醇溶液清洗

HB220815

丁基琼脂糖4FF弱疏水层析预装柱5mL Butyl 4FF

暂无内容

丁基琼脂糖4FF弱疏水层析预装柱5mL Butyl 4FF

暂无内容

Heparin Agarose 6FF(肝素亲和纯化介质)

Heparin Agarose 6FF(肝素亲和纯化介质)

产品说明书

FAQ

COA

已发表文献

Heparin Agarose 6FF是一种新型亲和层析介质,是将肝素偶联到交联琼脂糖凝胶过滤层析介质上。肝素是一种含硫酸酯的酸性多糖,能和抗凝血因子Ⅲ、凝血因子、蛋白合成因子、脂蛋白、干扰素、核酸结合蛋白、限制内切酶、凝血酶及类凝血酶等生物大分子结合,因此本产品可应用于上述产品的分离纯化,同时产品基团脱落少,使用寿命长,操作方便。

 

产品性质

基质

高度交联的琼脂糖凝胶

配基

肝素

配基密度

>5 mg/mL

粒径

45-165 µm

载量

>3 mg抗凝血因子Ⅲ(ATⅢ)/mL基质

耐压流速

250-400 cm/h(在0.1 MPa)

热性

121℃,0.02 M NaH2PO4 pH7.5,30 min,5次

PH稳定性

4~10(长期);3~13(短期,CIP)

化学稳定性

在常用水相溶液中稳定:0.1M氢氧化钠;0.05M乙酸钠;8M尿素;6M盐酸胍;非离子去污剂;10%丙三醇

储存缓冲液

20%乙醇+0.05 mol/L乙酸钠缓冲液,4~8℃

 

运输和保存方法

1.常温运输避免日晒、雨淋、重压。

2.密封保存在4~8℃(保存溶液为20%乙醇+0.05mol/L乙酸钠缓冲液)干燥、通风、清洁处,不可冷冻。

3.有效期5年。

 

注意事项

1.该介质从冷室或冰箱中取出后最好在室温下恢复到室温,然后缓慢摇匀后装柱,以免产生气泡影响柱效。

2.吸附:20 mmol/L~50 mmol/L,pH7.4~8.0的缓冲液,为避免离子交换的干扰,缓冲液可适当加50 mmol/L~100 mmol/L NaCl,最常用的为Tris-HCl缓冲溶液。

3.上样样品必须与平衡柱子缓冲液的 pH、电导相同。

4.洗脱过程中应严格控制流速,且勿过快。

5.加样及整个洗脱过程中,严防柱面变干。

6.了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

7.产品仅作科研用途!

 

使用方法

1 装柱 

装柱按照标准操作规程操作。必须保证每种材料都处于工作温度,凝胶装柱前需要脱气。

2 平衡

2~5个柱床体积的初始缓冲溶液进行平衡,直至pH和电导率保持不变。常用的缓冲液为pH 7.4~8.0的0.02 mol/L~0.05 mol/L的Tris-HCl或PBS缓冲液。

3 上样

样品的预处理:样品需先用0.45 μm滤膜过滤,然后上样,以免堵塞层析柱。上样量根据样品的性质和层析介质的量进行选择,也可通过线性实验找到最佳上样量。

4 洗脱

可通过改变离子强度来达到洗脱效果,一般可在pH7.4~8.0的缓冲液中加0.2~2 mol/L NaCl 进行,也可改变 pH 值来进行洗脱。一般洗脱方式有恒定洗脱、梯度洗脱、阶跃洗脱,推荐使用梯度洗脱。

5 在位清洗

1)去除因离子交换作用吸附的蛋白:用2 mol/L NaCl溶液反向清洗2~3个柱床体积。

2)去除强疏水性蛋白和脂质等:用70%乙醇或者30%异丙醇反向清洗4个柱床体积。

6 再生

先用0.1 mol/L Tris-HCl pH7.0缓冲液洗3个柱床体积,然后用0.1 mol/L NaOH(含2 mol/L NaCl)洗3个柱床体积,最后用20%乙醇溶液洗3个柱床体积。经常用酸碱洗填料会使填料的吸附能力下降,所以清洗要尽量缩短时间。  

                                          HB220606

Heparin Agarose 6FF(肝素亲和纯化介质)

暂无内容

Heparin Agarose 6FF(肝素亲和纯化介质)

暂无内容

Heparin Agarose 6FF是一种新型亲和层析介质,是将肝素偶联到交联琼脂糖凝胶过滤层析介质上。肝素是一种含硫酸酯的酸性多糖,能和抗凝血因子Ⅲ、凝血因子、蛋白合成因子、脂蛋白、干扰素、核酸结合蛋白、限制内切酶、凝血酶及类凝血酶等生物大分子结合,因此本产品可应用于上述产品的分离纯化,同时产品基团脱落少,使用寿命长,操作方便。

 

产品性质

基质

高度交联的琼脂糖凝胶

配基

肝素

配基密度

>5 mg/mL

粒径

45-165 µm

载量

>3 mg抗凝血因子Ⅲ(ATⅢ)/mL基质

耐压流速

250-400 cm/h(在0.1 MPa)

热性

121℃,0.02 M NaH2PO4 pH7.5,30 min,5次

PH稳定性

4~10(长期);3~13(短期,CIP)

化学稳定性

在常用水相溶液中稳定:0.1M氢氧化钠;0.05M乙酸钠;8M尿素;6M盐酸胍;非离子去污剂;10%丙三醇

储存缓冲液

20%乙醇+0.05 mol/L乙酸钠缓冲液,4~8℃

 

运输和保存方法

1.常温运输避免日晒、雨淋、重压。

2.密封保存在4~8℃(保存溶液为20%乙醇+0.05mol/L乙酸钠缓冲液)干燥、通风、清洁处,不可冷冻。

3.有效期5年。

 

注意事项

1.该介质从冷室或冰箱中取出后最好在室温下恢复到室温,然后缓慢摇匀后装柱,以免产生气泡影响柱效。

2.吸附:20 mmol/L~50 mmol/L,pH7.4~8.0的缓冲液,为避免离子交换的干扰,缓冲液可适当加50 mmol/L~100 mmol/L NaCl,最常用的为Tris-HCl缓冲溶液。

3.上样样品必须与平衡柱子缓冲液的 pH、电导相同。

4.洗脱过程中应严格控制流速,且勿过快。

5.加样及整个洗脱过程中,严防柱面变干。

6.了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

7.产品仅作科研用途!

 

使用方法

1 装柱 

装柱按照标准操作规程操作。必须保证每种材料都处于工作温度,凝胶装柱前需要脱气。

2 平衡

2~5个柱床体积的初始缓冲溶液进行平衡,直至pH和电导率保持不变。常用的缓冲液为pH 7.4~8.0的0.02 mol/L~0.05 mol/L的Tris-HCl或PBS缓冲液。

3 上样

样品的预处理:样品需先用0.45 μm滤膜过滤,然后上样,以免堵塞层析柱。上样量根据样品的性质和层析介质的量进行选择,也可通过线性实验找到最佳上样量。

4 洗脱

可通过改变离子强度来达到洗脱效果,一般可在pH7.4~8.0的缓冲液中加0.2~2 mol/L NaCl 进行,也可改变 pH 值来进行洗脱。一般洗脱方式有恒定洗脱、梯度洗脱、阶跃洗脱,推荐使用梯度洗脱。

5 在位清洗

1)去除因离子交换作用吸附的蛋白:用2 mol/L NaCl溶液反向清洗2~3个柱床体积。

2)去除强疏水性蛋白和脂质等:用70%乙醇或者30%异丙醇反向清洗4个柱床体积。

6 再生

先用0.1 mol/L Tris-HCl pH7.0缓冲液洗3个柱床体积,然后用0.1 mol/L NaOH(含2 mol/L NaCl)洗3个柱床体积,最后用20%乙醇溶液洗3个柱床体积。经常用酸碱洗填料会使填料的吸附能力下降,所以清洗要尽量缩短时间。  

                                          HB220606

Heparin Agarose 6FF(肝素亲和纯化介质)

暂无内容

Heparin Agarose 6FF(肝素亲和纯化介质)

暂无内容

Protein A Sepharose 4FF 产品使用说明书

Protein A Sepharose 4FF 产品使用说明书

——高IgG结合特异性 高流速 低蛋白A脱落

产品特点

特点

 

结合特异性强,基团脱落少

颗粒大小

50-160 μm

基质

4%的交联琼脂糖凝胶

推荐流速

50-300cm/h

配基

重组protein A

使用温度

常温

配基密度

6mg重组蛋白A/ml

pH范围

3-10

动态吸附载量

60mg人IgG/ml

保存温度

+4~8℃

蛋白A残留

小于3ng蛋白A/mg IgG

保存液体

20%乙醇

 

Protein A Sepharose 4FF ,上海金畔生物专业代理,:

 产品介绍

Protein A sepharose介质是经过我们公司长期开发,在公司生产的native protein A 的基础上精致而成。通过Protein A Sepharose 4FF,可分离和纯化多种哺乳动物不同亚型的抗体或包含抗体Fc片段的基因工程重组蛋白。本产品相对同类产品具有如下优势:

1、偶联条件温和,更好的保持了protein A的构象,所以抗体载量高,同体积的介质,相同规模的纯化设备,相同体积介质,抗体的产量明显高于用同类产品,大大的降低了抗体药物生产成本。

2、非常稳定,不易脱落,用其生产的抗体中protein A的残留比同类产品的更少。

3、公司的Protein A 以及Protein A sepharose的生产都是在清洁车间生产,符合制药企业生产需求。

4、公司生产的Protein A sepharose使用寿命长,常规条件下能够重复使用100次以上。

 

 

使用说明

(1)缓冲液的准备:

平衡缓冲液:纯化不同动物和不同亚型抗体时所用平衡缓冲液是不同的,部分参照如下: 抗体种类

平衡缓冲液成分

人IgG1、人IgG2、小鼠IgG2a、小鼠IgG2b

10mM 磷酸盐缓冲液,150mM NaCl,pH 7.21

人IgG3、人IgG4、小鼠IgG1、大鼠IgG3

50mM Tris-Cl,3M NaCl,pH7.8-8.5

 

(2)样品的准备

样品上柱前先用平衡缓冲液稀释5至10倍,从而确保样品液的成分和pH与平衡缓冲液相近。如果上样体积过大,可以采取调节上样液pH和盐浓度的方式,使样品的pH和电导与平衡液接近,使样品中的缓冲体系与平衡缓冲液相同。

细胞培养液中大量的血清蛋白会对亲和层析造成一定的干扰,去血清处理或稀释样品将提高纯化抗体收率。

样品在上柱前也需0.45μm微孔滤膜过滤。

(3)操作步骤

a) 填料装柱后,用纯水流洗至少3个柱管体积,以冲掉乙醇,再用平衡缓冲液流洗至少5个柱管体积来平衡柱子。

b) 将样品上柱,上样流速控制在60cm/h。

c) 平衡缓冲液再洗5-10个柱床体积,把UV洗至基线。

d) 洗脱缓冲液洗脱,收集洗脱峰,立即用中和缓冲液中和到中性。

e) 再生缓冲液流洗3-5个柱床体积。先后用纯水、20%乙醇分别流洗3-5个柱床体积。柱子置于+4-8℃保存。

操作中如果没有在线的蛋白监测系统,洗脱峰时可以分阶段

收集,zui后根据测定结果合并活性部分。

BiotSep生物素化链霉亲和素6FF层析预装柱|BiotSep Streptavidin 6FF Chromatography Column,5ml

BiotSep生物素化链霉亲和素6FF层析预装柱|BiotSep Streptavidin 6FF Chromatography Column,5ml

产品说明书

FAQ

COA

已发表文献

产品描述

Streptavidin Agarose Resin 6FF是一种生物素或生物素化的蛋白、抗体等物质的纯化树脂,其作用原理是基于链霉亲和素与生物之间的相互作用,将链霉亲和素高度交联于6%琼脂糖上,独特的制备工艺使其具有更高的物理化学特性,可以耐受更高的压力,在相对较高的流速下,实现对目的蛋白的纯化,更适于工业大规模蛋白的纯化。

由于链霉亲和素与生物之间的亲和力很强,纯化时需要在变性条件下洗脱;而链霉亲和素对亚氨基生物素的亲和力相对较弱,可以在 pH 9.5-11.0 结合,pH 4.0 时洗脱,不需要使用变性剂,所以能更好的保持亲和素偶联物的活性。

BiotSep Streptavidin 6FF Chromatography Column, 5ML是装填了Streptavidin Agarose Resin 6FF的一种中压预装柱,规格5 mL,预装柱具有标准接口,可以适配商品化的各类中压色谱系统,如ÄKTA 等,方便客户操作。

产品性质

基质(Matrix)

高度交联的6%琼脂糖微球

配体(Ligand)

链霉亲和素

粒径(Bead   size)

45-165 µm

载量(Capacity)

>200 nmol Biotin/mL介质

最大压力(PressureMax)

0.3 MPa,3 bar

pH稳定范围(pH   range)

2-10

储存缓冲液(Buffer)

20%乙醇

运输和保存方法

冰袋运输。4℃保存,有效期2年。

 

需准备试剂

所用水和Buffer在使用前最好用0.22 µm或0.45 µm滤膜过滤除菌。

生物素或生物素化物质的纯化

结合/洗杂缓冲液:150 mM NaCl,20 mM NaH2PO4,pH 7.4

洗脱缓冲液:8 M盐酸胍,pH 1.5

亚氨基生物素标签物质的纯化

结合/洗杂缓冲液:50 mM碳酸铵,0.5 M NaCl,pH 10.0

洗脱缓冲液:50 mM碳酸铵,0.5 M NaCl,pH 4.0

使用方法

注:样品在上样前最好用0.22 µm或0.45 µm滤膜过滤,减少杂质以防阻塞柱子。另外,确保样品溶液有合适的离子强度和pH值,可以用结合/洗涤缓冲液对血清样品、腹水或细胞培养液稀释,或者样品用结合/洗涤缓冲液透析。

1.样品纯化(以ÄKTA为例)

1)准备:将泵管道中注满去离子水。去掉上塞子,将层析柱连接至色谱系统中。再折断下口,将预装柱接到色谱系统中,并旋紧。

2)清洗:3-5倍柱体积去离子水冲洗层析柱中储存液。

3)平衡:用5倍柱体积的结合Buffer平衡层析柱,使填料处于与目的蛋白相同的缓冲体系下,起到保护蛋白的作用。
4)上样:将样品加到平衡好的层析柱中,推荐流速1-5 mL/min,保证目的蛋白与树脂充分接触,提高目的蛋白的回收率,收集流出液,待检测。
注:样品的粘度增加使得即使上样体积很少,也会导致层析柱很大的反压。上样量不要超过柱子的结合能力。大量的样品体积也可能造成很大的反压,使得进样器更难使用。
5)洗杂:用10-15倍柱体积的洗杂Buffer进行清洗,直到紫外吸收达到一个稳定的基线,去除非特异性吸附的杂蛋白,收集洗杂液,待检测。
6)洗脱:用洗脱Buffer 采用一步法或线性梯度洗脱。一步洗脱中,通常5倍柱体积洗脱液足够将目的蛋白洗脱下来。也可以用一个小的梯度,例如20倍柱体积或更多,来分离不同结合强度的蛋白质。
7)清洗及保存:依次使用3倍柱体积的结合Buffer和5倍柱体积的去离子水平衡填料,最后再用5倍柱体积的20%的乙醇平衡,然后保存在等体积的20%的乙醇中,置于4度保存,防止填料被细菌污染。

 

2 .SDS-PAGE检测

将纯化过程中得到的样品(包括原始样品、流出组分、洗杂及洗脱组分等)利用SDS-PAGE进行检测,判定其纯化效果。
【注】由于盐酸胍的带电性强,会中和SDS的电荷,影响后面蛋白在上样缓冲液里的带电性能,电泳时产生沉淀,导致无法电泳。因此后续可以对样本进行透析或者盐析(透析可利用透析袋,PBS作为透析液,透析两次,每次1小时,透析液的体积可控制在样本的100倍)。

 

3 .填料清洗

随着非特异结合蛋白的增多和蛋白的聚集,会造成流速和结合载量性能下降,此时需对填料进行清洗。

1)去除一些沉淀或变形物质

用2倍柱体积的0.1 M NaOH或6 M盐酸胍或8 M尿素溶液进行清洗,然后立即用5倍柱体积的PBS,pH 7.4清洗。

2)去除一些疏水性吸附造成的非特异性吸附物质

用3-4倍柱体积的70%乙醇或2倍柱体积1% Triton X-100清洗,然后立即用5倍柱体积的PBS,pH 7.4清洗。

注意事项

1)请勿冷冻保存本产品。

2)所有操作过程中,样本需要在4℃或冰上操作。

3)为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

4)本产品仅作科研用途!

相关产品

20512ES08

Streptavidin Agarose   Resin 6FF 链霉亲和素琼脂糖纯化树脂

5 mL

20513ES03

BiotSep Streptavidin   6FF Chromatography Column, 1ML 生物素分子纯化预装柱,1ML

1 mL

20513ES08

BiotSep Streptavidin   6FF Chromatography Column, 1ML 生物素分子纯化预装柱,1ML

5×1 mL

20514ES08

BiotSep Streptavidin   6FF Chromatography Column, 5ML 生物素分子纯化预装柱,5ML

5 mL

20514ES25

BiotSep Streptavidin   6FF Chromatography Column, 5ML 生物素分子纯化预装柱,5ML

5×5 mL

 
HB200817

Q:上样的流速是多少?

A:推荐流速 1 -5 mL/min,保证目的蛋白与树脂充分接触,提高目的蛋白的回收率, 收集流出液,待检测。

Q:该产品的配体是什么?

A:链霉亲和素。

Q:上样量如何确定?

A:根据载量>200 nmol Biotin/mL 介质,及柱效来确定上样量。

Q:样品能不能在室温下操作?

A:不能,所有操作过程中,样本需要在 4℃或冰上操作。

Q:该产品的主要应用是什么

A主要是用于固定生物素化抗原纯化抗体或者固定生物素化抗体纯化抗原也可以用于纯化亚氨基生物素标签蛋白。如果用于纯化生物素的蛋白,只能在变性的条件下洗脱下来,那样柱子也就没法继续使用,所以一般不直接纯化生物素的蛋白。

[1] Lin J, Jiang X, Dong M, et al. Hepatokine Pregnancy Zone Protein Governs the Diet-Induced Thermogenesis Through Activating Brown Adipose Tissue. Adv Sci (Weinh). 2021;8(21):e2101991. doi:10.1002/advs.202101991(IF:16.806)

产品描述

Streptavidin Agarose Resin 6FF是一种生物素或生物素化的蛋白、抗体等物质的纯化树脂,其作用原理是基于链霉亲和素与生物之间的相互作用,将链霉亲和素高度交联于6%琼脂糖上,独特的制备工艺使其具有更高的物理化学特性,可以耐受更高的压力,在相对较高的流速下,实现对目的蛋白的纯化,更适于工业大规模蛋白的纯化。

由于链霉亲和素与生物之间的亲和力很强,纯化时需要在变性条件下洗脱;而链霉亲和素对亚氨基生物素的亲和力相对较弱,可以在 pH 9.5-11.0 结合,pH 4.0 时洗脱,不需要使用变性剂,所以能更好的保持亲和素偶联物的活性。

BiotSep Streptavidin 6FF Chromatography Column, 5ML是装填了Streptavidin Agarose Resin 6FF的一种中压预装柱,规格5 mL,预装柱具有标准接口,可以适配商品化的各类中压色谱系统,如ÄKTA 等,方便客户操作。

产品性质

基质(Matrix)

高度交联的6%琼脂糖微球

配体(Ligand)

链霉亲和素

粒径(Bead   size)

45-165 µm

载量(Capacity)

>200 nmol Biotin/mL介质

最大压力(PressureMax)

0.3 MPa,3 bar

pH稳定范围(pH   range)

2-10

储存缓冲液(Buffer)

20%乙醇

运输和保存方法

冰袋运输。4℃保存,有效期2年。

 

需准备试剂

所用水和Buffer在使用前最好用0.22 µm或0.45 µm滤膜过滤除菌。

生物素或生物素化物质的纯化

结合/洗杂缓冲液:150 mM NaCl,20 mM NaH2PO4,pH 7.4

洗脱缓冲液:8 M盐酸胍,pH 1.5

亚氨基生物素标签物质的纯化

结合/洗杂缓冲液:50 mM碳酸铵,0.5 M NaCl,pH 10.0

洗脱缓冲液:50 mM碳酸铵,0.5 M NaCl,pH 4.0

使用方法

注:样品在上样前最好用0.22 µm或0.45 µm滤膜过滤,减少杂质以防阻塞柱子。另外,确保样品溶液有合适的离子强度和pH值,可以用结合/洗涤缓冲液对血清样品、腹水或细胞培养液稀释,或者样品用结合/洗涤缓冲液透析。

1.样品纯化(以ÄKTA为例)

1)准备:将泵管道中注满去离子水。去掉上塞子,将层析柱连接至色谱系统中。再折断下口,将预装柱接到色谱系统中,并旋紧。

2)清洗:3-5倍柱体积去离子水冲洗层析柱中储存液。

3)平衡:用5倍柱体积的结合Buffer平衡层析柱,使填料处于与目的蛋白相同的缓冲体系下,起到保护蛋白的作用。
4)上样:将样品加到平衡好的层析柱中,推荐流速1-5 mL/min,保证目的蛋白与树脂充分接触,提高目的蛋白的回收率,收集流出液,待检测。
注:样品的粘度增加使得即使上样体积很少,也会导致层析柱很大的反压。上样量不要超过柱子的结合能力。大量的样品体积也可能造成很大的反压,使得进样器更难使用。
5)洗杂:用10-15倍柱体积的洗杂Buffer进行清洗,直到紫外吸收达到一个稳定的基线,去除非特异性吸附的杂蛋白,收集洗杂液,待检测。
6)洗脱:用洗脱Buffer 采用一步法或线性梯度洗脱。一步洗脱中,通常5倍柱体积洗脱液足够将目的蛋白洗脱下来。也可以用一个小的梯度,例如20倍柱体积或更多,来分离不同结合强度的蛋白质。
7)清洗及保存:依次使用3倍柱体积的结合Buffer和5倍柱体积的去离子水平衡填料,最后再用5倍柱体积的20%的乙醇平衡,然后保存在等体积的20%的乙醇中,置于4度保存,防止填料被细菌污染。

 

2 .SDS-PAGE检测

将纯化过程中得到的样品(包括原始样品、流出组分、洗杂及洗脱组分等)利用SDS-PAGE进行检测,判定其纯化效果。
【注】由于盐酸胍的带电性强,会中和SDS的电荷,影响后面蛋白在上样缓冲液里的带电性能,电泳时产生沉淀,导致无法电泳。因此后续可以对样本进行透析或者盐析(透析可利用透析袋,PBS作为透析液,透析两次,每次1小时,透析液的体积可控制在样本的100倍)。

 

3 .填料清洗

随着非特异结合蛋白的增多和蛋白的聚集,会造成流速和结合载量性能下降,此时需对填料进行清洗。

1)去除一些沉淀或变形物质

用2倍柱体积的0.1 M NaOH或6 M盐酸胍或8 M尿素溶液进行清洗,然后立即用5倍柱体积的PBS,pH 7.4清洗。

2)去除一些疏水性吸附造成的非特异性吸附物质

用3-4倍柱体积的70%乙醇或2倍柱体积1% Triton X-100清洗,然后立即用5倍柱体积的PBS,pH 7.4清洗。

注意事项

1)请勿冷冻保存本产品。

2)所有操作过程中,样本需要在4℃或冰上操作。

3)为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

4)本产品仅作科研用途!

相关产品

20512ES08

Streptavidin Agarose   Resin 6FF 链霉亲和素琼脂糖纯化树脂

5 mL

20513ES03

BiotSep Streptavidin   6FF Chromatography Column, 1ML 生物素分子纯化预装柱,1ML

1 mL

20513ES08

BiotSep Streptavidin   6FF Chromatography Column, 1ML 生物素分子纯化预装柱,1ML

5×1 mL

20514ES08

BiotSep Streptavidin   6FF Chromatography Column, 5ML 生物素分子纯化预装柱,5ML

5 mL

20514ES25

BiotSep Streptavidin   6FF Chromatography Column, 5ML 生物素分子纯化预装柱,5ML

5×5 mL

 
HB200817

Q:上样的流速是多少?

A:推荐流速 1 -5 mL/min,保证目的蛋白与树脂充分接触,提高目的蛋白的回收率, 收集流出液,待检测。

Q:该产品的配体是什么?

A:链霉亲和素。

Q:上样量如何确定?

A:根据载量>200 nmol Biotin/mL 介质,及柱效来确定上样量。

Q:样品能不能在室温下操作?

A:不能,所有操作过程中,样本需要在 4℃或冰上操作。

Q:该产品的主要应用是什么

A主要是用于固定生物素化抗原纯化抗体或者固定生物素化抗体纯化抗原也可以用于纯化亚氨基生物素标签蛋白。如果用于纯化生物素的蛋白,只能在变性的条件下洗脱下来,那样柱子也就没法继续使用,所以一般不直接纯化生物素的蛋白。

[1] Lin J, Jiang X, Dong M, et al. Hepatokine Pregnancy Zone Protein Governs the Diet-Induced Thermogenesis Through Activating Brown Adipose Tissue. Adv Sci (Weinh). 2021;8(21):e2101991. doi:10.1002/advs.202101991(IF:16.806)

FormuMax F60103F2-TR 说明书

世界*实验材料供应商 FormuMax上海金畔生物为其中国代理, FormuMax在一直是行业的*,一直为广大科研客户提供zui为的产品和服务,上海金畔生物一直秉承为中国科研客户带来的产品,的服务,FormuMax就是为了给广大科研客户带来更加完善的产品和服务,您的满意将是我们zui大的收获

FormuMax中国代理FormuMax上海代理, FormuMax北京代理,FormuMax广东代理, FormuMax江苏代理FormuMax湖北代理,FormuMax天津,FormuMax黑龙江代理,FormuMax内蒙古代理,FormuMax吉林代理,FormuMax福建代理,FormuMax江苏代理, FormuMax浙江代理, FormuMax四川代理,

 

FormuMax Scientific是一家位于加州北部硅谷中心提供脂质体给药的专业公司,以满足制药、生物技术、化妆品及营养企业日益增长的研发需求。FormuMax Scientific力求成为脂质体给药领域的,特别是在配制用脂质体及其他特定纳米包埋传输的复杂药物领域。在药物传输企业,FormuMax Scientific拥有由世界*专家的技术团队,并致力于脂质体及其它以磷脂为基础的先进药物传输技术。FormuMax 是目前*一家在线提供大量预制脂质体试剂的公司,可为大学、研究所、研究中心及各种研发企业提供的药物传输试剂。同时该公司还可为基础研究、配方可行性、定制配方制备、配方鉴定及分析提供技术服务。

200nm DOPC/CHOL Liposomes labeled with Texas Red DHPE

200nm DOPC /胆固醇脂质体标记的德克萨斯红DHPE

(F60103F2-TR)

货号:F60103F2-TR

规格:1ml、5ml

 

Product Description

Fluorescent DOPC/CHOL Liposomes labeled with Texas Red® 488 DHPE (200nm)

High quality LUV liposomes labeled with Texas Red® DHPE (TR-DHPE) are ready to use. The liposomes are prepared by the extrusion technology to 200-250nm with very tight particle size distribution. The product is sterile filtered through 0.45um and filled in sterile vials guaranteed to be stable for 3 months when stored in refrigerator.

The phospholipid, Texas Red® 1,2-dihexadecanoyl-sn-glycero-3-phosphoethanolamine, triethylammonium salt (Texas Red® DHPE) is labeled on the head group with the bright, red-fluorescent Texas Red® dye (excitation/emission maxima ~595/615 nm).   

 

Specifications

Product code: F60103F2-TR

Lipid composition: DOPC/CHOL/TR-DHPE (54:45:1 mol/mol)

Lipid concentration: 50 mM (50-55 mM)

Texas Red DHPE: 0.5 mM (0.54 mg/mL)

Mean particle size: 230 nm (200-250 nm, intensity weighted lognormal per DSL)

Particle size distribution: 80-100nm (half-width)

Hydration buffer: 10% sucrose, 20mM HEPES, pH 7.3 ± 0.2

Storage: in refrigerator (2 – 8 degree C)

Shelf-life: 3 month for unopened vials, protect from light