阿尔玛蓝试剂盒 阿尔玛蓝染色试剂|Alamar Blue

阿尔玛蓝试剂盒 阿尔玛蓝染色试剂|Alamar Blue

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FAQ

COA

已发表文献

检测原理
 

阿尔玛蓝(Alamar Blue)是一种氧化还原指示剂,能根据代谢活性产生吸亮度变化和荧光信号。这是一种安全无毒的染料,可用于细胞活性和细胞增殖的定量分析以及细胞因子生物测定和体外细胞毒性研究,能有效测定动物、真菌和细菌细胞的天然代谢活性。Alamar Blue在氧化状态下呈现紫蓝色无荧光性,而在还原状态下,转变为呈粉红或红色荧光的还原产物,反映所研究的细胞或微生物对氧分子的消耗,因而常被用作氧化还原指示剂,以显示被观察细胞和细菌的代谢活动。这种测定是基于具有代谢活性的细胞将试剂转换成荧光和比色指示剂的能力。在细胞增殖过程中,细胞内NADPH/NADP、FADH/FAD、FMNH/FMN和NADH/NAD的比值升高,处于还原环境。摄入细胞内的染料被这些代谢中间体及细胞色素类还原后释放到细胞外并溶于培养基中,使培养基从无荧光的靛青蓝变成有荧光的粉红色。受损和无活性细胞具有较低的天然代谢活性,因此对应的信号较低。可以用普通分光光度计或荧光光度计检测,其激发光波长在530-560 nm之间,发射光波长为590 nm。吸光度和荧光强度与活性细胞数成正比。

本品可广泛地用于细胞增殖代谢,药物的细胞毒作用的体外测定以及病原微生物的的快速检测与鉴定。 与台盼兰、TTC、MTT、MTS等分析法相比,Alamar Blue具有更多的优势。Alamar Blue采用单一试剂,可以连续、快速地检测细胞的增生状态。由于Alamar Blue对细胞无毒、无害,不影响细胞的抗体合成与分泌等活性,因此可以对同一批细胞的增生状态进行连续观察和进一步的实验观察,因此有操作简便和几乎不干扰细胞正常代谢的特点。 

运输与保存方法
 

冰袋(wet ice)运输。产品4ºC避光保存,至少一年有效。

注意事项
 

1.需客户自行准备100%还原型Alamar Blue试剂。为得到还原型Alamar Blue,需配制Alamar Blue与细胞培养基的混合溶液,Alamar Blue与细胞培养基的比值为1:10,高压灭菌15 min。(不能对浓缩的Alamar Blue高压灭菌,也不能用PBS配制溶液,因为100%还原型Alamar Blue在PBS中不稳定。)

2.为得到最好的结果,建议实验前先摸索孵育时间和接种细胞数量。

3.合适密度的细胞可以增加检测灵敏度。对于96 孔板,我们建议每孔接种100 微升细胞,细胞浓度范围为:贴壁细胞在100-10,000/孔,悬浮细胞在2,000-50,000/孔,并以培养基为空白对照。对于384 孔板,细胞浓度和接种量均减半。

4.整个过程均应为无菌操作,因为微生物污染物同样可以还原检测试剂而影响实验结果。

5.注意接种细胞浓度和加入检测试剂后孵育时间。细胞浓度过高或孵育时间过长,会导致继发性还原反应,产生无色和荧光消失。

6.孵育时,须避光。

7.本产品可以使用荧光或分光光度计检测,但荧光的灵敏度高,实验误差小,推荐使用荧光检测。
8.本产品仅作科研用途!

 

操作说明
 

一、制作标准曲线(测定最佳孵育时间和细胞数量)

1. 每孔加入100微升细胞悬液(对数生长期细胞),对细胞计数。按比例依次用培养基等比稀释成一个细胞浓度梯度,一般要做3-5个细胞浓度梯度,每个浓度建议3-6个复孔。注:设置阴性对照:细胞培养基中不加入细胞;阳性对照:100微升100%还原型Alamar Blue(不含细胞)。

2. 每孔加入10微升Alamar Blue。阳性对照孔中加入10微升无菌的超纯水。

3. 放入细胞培养箱内培养(37℃,5% CO2)一定时间。培养基的颜色由靛青蓝开始变成粉红色就可以进入下一步。

4. 推荐用荧光分光光度计检测,激发光波长在530-560 nm之间,发射光波长为590 nm。

5. 普通分光光度计在570 nm测定吸光度,参考波长600nm。也可用570/630 nm和540/600 nm替代。

6. 绘制标准曲线。以细胞数量或孵育时间为横坐标(X轴),Alamar Blue还原率为纵坐标(Y轴)。根据此标准曲线可以测定出适合的细胞数量或孵育时间(使用此标准曲线的前提是实验的条件要一致)。

二、细胞毒性和细胞增殖检测

1. 每孔加入100微升细胞悬液(对数生长期细胞),对细胞计数。建议细胞数量为104/mL,具体每孔需要的细胞数量,需根据细胞类型决定。

2. 细胞中加入待检测药物,为检测药物对细胞增殖的作用,请设置合适的对照组,包括刺激细胞和非刺激细胞。

3. 混匀,放入细胞培养箱内孵育(37℃,5% CO2)一段时间。

4. 每孔加入10微升Alamar Blue。阳性对照孔中加入10微升无菌的超纯水。

5. 放入细胞培养箱内孵育(37℃,5% CO2)4-8 h,最佳孵育时间取决于细胞类型。培养基的颜色由靛青蓝开始变成粉红色就可以进入下一步。

6. 推荐用荧光分光光度计检测,激发光波长在530-560 nm之间,发射光波长为590 nm。

7. 普通分光光度计在570nm测定吸光度,参考波长600 nm。也可用570/630 nm和540/600 nm替代。

活力计算         
                                

1.普通分光光度计检测

Alamar Blue还原率(%)=[(E600×A570)-(E570×A600)]/[(E570′×C600)-E600′×C570] ×100

E570=氧化型Alamar Blue在570 nm波长的消光系数=80586;

E600=氧化型Alamar Blue在600 nm波长的消光系数=117216;

A570=检测孔在570 nm波长的吸亮度;

A600=检测孔在600 nm波长的吸亮度;

E570′=还原型Alamar Blue在570 nm波长的消光系数=155677;

E600′=还原型Alamar Blue在600 nm波长的消光系数=14652;

C570=阴性对照孔在570 nm波长的吸亮度(培养基,Alamar Blue,无细胞);

C600=阴性对照孔在600 nm波长的吸亮度(培养基,Alamar Blue,无细胞);

 

如果使用570/630 nm和540/600 nm作为替代,则:

E540=氧化型Alamar Blue在540 nm波长的消光系数=47619;

E630=氧化型Alamar Blue在630 nm波长的消光系数=34798;

E540′=还原型Alamar Blue在540 nm波长的消光系数=104395;

E630′=还原型Alamar Blue在630 nm波长的消光系数=5494;

2.荧光分光光度计检测

Alamar Blue还原率(%)= (实验组F590-阴性对照组F590)/(100%还原型阳性对照F590-阴性对照组F590)×100

F590=590 nm波长荧光值

 

HB210524

Q:还原率的计算其中一步是还原型阳性对照荧光值减去阴性对照的荧光值,减去后成负值?

A:阳性对照的值比实验组高,需要重新制备。阳性对照是 100%还原的,高温使得阿尔玛蓝变成还原态的。

[1] Yin H, Zhou M, Chen X, et al. Fructose-coated Ångstrom silver prevents sepsis by killing bacteria and attenuating bacterial toxin-induced injuries. Theranostics. 2021;11(17):8152-8171. Published 2021 Jul 13. doi:10.7150/thno.55334(IF:11.556)
[2] Wang Q, Li J, Zhu J, et al. Genome-wide CRISPR/Cas9 screening for therapeutic targets in NSCLC carrying wild-type TP53 and receptor tyrosine kinase genes. Clin Transl Med. 2022;12(6):e882. doi:10.1002/ctm2.882(IF:11.492)
[3] Xiao Y, Li S, Pang Z, et al. Multi-reagents dispensing centrifugal microfluidics for point-of-care testing. Biosens Bioelectron. 2022;206:114130. doi:10.1016/j.bios.2022.114130(IF:10.618)
[4] Chen J, Zhou D, Nie Z, et al. A scalable coaxial bioprinting technology for mesenchymal stem cell microfiber fabrication and high extracellular vesicle yield. Biofabrication. 2021;14(1):10.1088/1758-5090/ac3b90. Published 2021 Dec 3. doi:10.1088/1758-5090/ac3b90(IF:10.020)
[5] Yang P, Zhang S, Zhang N, et al. Tailoring Synthetic Melanin Nanoparticles for Enhanced Photothermal Therapy. ACS Appl Mater Interfaces. 2019;11(45):42671-42679. doi:10.1021/acsami.9b16861(IF:8.456)
[6] Lu T, Li M, Zhao M, et al. Metformin inhibits human non-small cell lung cancer by regulating AMPK-CEBPB-PDL1 signaling pathway. Cancer Immunol Immunother. 2022;71(7):1733-1746. doi:10.1007/s00262-021-03116-x(IF:6.968)
[7] Zhang H, Zhou Y, Zhang W, et al. Construction of vascularized tissue-engineered bone with a double-cell sheet complex. Acta Biomater. 2018;77:212-227. doi:10.1016/j.actbio.2018.07.024(IF:6.383)
[8] Chen C, Zhu S, Zhang X, et al. Targeting the Synthetic Vulnerability of PTEN-Deficient Glioblastoma Cells with MCL1 Inhibitors. Mol Cancer Ther. 2020;19(10):2001-2011. doi:10.1158/1535-7163.MCT-20-0099(IF:5.615)
[9] Sun N, Yin S, Lu Y, Zhang W, Jiang X. Graphene oxide-coated porous titanium for pulp sealing: an antibacterial and dentino-inductive restorative material. J Mater Chem B. 2020;8(26):5606-5619. doi:10.1039/d0tb00697a(IF:5.344)
[10] Chen Z, Zhang Z, Chen M, Xie S, Wang T, Li X. Synergistic antitumor efficacy of hybrid micelles with mitochondrial targeting and stimuli-responsive drug release behavior. J Mater Chem B. 2019;7(9):1415-1426. doi:10.1039/c8tb02843e(IF:5.047)
[11] Chen L, Zhou D, Li X, Yang B, Xu T. Bioprinting of Human Cord Blood-Derived CD34+ Cells and Exploration of the Multilineage Differentiation Ability in Vitro. ACS Biomater Sci Eng. 2021;7(6):2592-2604. doi:10.1021/acsbiomaterials.0c01297(IF:4.749)
[12] Fu YY, Zhang L, Yang Y, et al. Synergistic antibacterial effect of ultrasound microbubbles combined with chitosan-modified polymyxin B-loaded liposomes on biofilm-producing Acinetobacter baumannii. Int J Nanomedicine. 2019;14:1805-1815. Published 2019 Mar 8. doi:10.2147/IJN.S186571(IF:4.471)
[13] Lu J, Hu X, Yuan T, et al. 3D-Printed Poly (P-Dioxanone) Stent for Endovascular Application: In Vitro Evaluations. Polymers (Basel). 2022;14(9):1755. Published 2022 Apr 26. doi:10.3390/polym14091755(IF:4.329)
[14] Guo H, Wang Z, Du Q, Li P, Wang Z, Wang A. Stimulated phase-shift acoustic nanodroplets enhance vancomycin efficacy against methicillin-resistant Staphylococcus aureus biofilms. Int J Nanomedicine. 2017;12:4679-4690. Published 2017 Jun 30. doi:10.2147/IJN.S134525(IF:4.300)
[15] Chen Z, Chen C, Zhou T, et al. A high-throughput drug combination screen identifies an anti-glioma synergism between TH588 and PI3K inhibitors. Cancer Cell Int. 2020;20:337. Published 2020 Jul 23. doi:10.1186/s12935-020-01427-0(IF:4.175)
[16] Dai W, Wu J, Wang D, Wang J. Cancer gene therapy by NF-κB-activated cancer cell-specific expression of CRISPR/Cas9 targeting telomeres. Gene Ther. 2020;27(6):266-280. doi:10.1038/s41434-020-0128-x(IF:4.128)
[17] Zhou D, Chen L, Ding J, et al. A 3D engineered scaffold for hematopoietic progenitor/stem cell co-culture in vitro. Sci Rep. 2020;10(1):11485. Published 2020 Jul 13. doi:10.1038/s41598-020-68250-5(IF:3.998)
[18] Dongdong Z, Jin Y, Yang T, et al. Antiproliferative and Immunoregulatory Effects of Azelaic Acid Against Acute Myeloid Leukemia via the Activation of Notch Signaling Pathway. Front Pharmacol. 2019;10:1396. Published 2019 Nov 29. doi:10.3389/fphar.2019.01396(IF:3.845)
[19] Lu T, Ma K, Zhan C, et al. Downregulation of long non-coding RNA LINP1 inhibits the malignant progression of esophageal squamous cell carcinoma. Ann Transl Med. 2020;8(11):675. doi:10.21037/atm-20-1009(IF:3.297)
[20] Zhuang M, Liu T, Song K, Ge D, Li X. Thermo-responsive poly(N-isopropylacrylamide)-grafted hollow fiber membranes for osteoblasts culture and non-invasive harvest. Mater Sci Eng C Mater Biol Appl. 2015;55:410-419. doi:10.1016/j.msec.2015.05.040(IF:3.088)
[21] Huang Z, Yang L, Hu X, et al. Molecular Mechanism Study on Effect of Biodegradable Amino Acid Ester-Substituted Polyphosphazenes in Stimulating Osteogenic Differentiation. Macromol Biosci. 2019;19(6):e1800464. doi:10.1002/mabi.201800464(IF:2.895)
[22] Li X, Huang W, Zheng X, et al. Synergistic in vitro effects of indocyanine green and ethylenediamine tetraacetate-mediated antimicrobial photodynamic therapy combined with antibiotics for resistant bacterial biofilms in diabetic foot infection. Photodiagnosis Photodyn Ther. 2019;25:300-308. doi:10.1016/j.pdpdt.2019.01.010(IF:2.589)
[23] Yang G, Xiao Z, Ren X, et al. Enzymatically crosslinked gelatin hydrogel promotes the proliferation of adipose tissue-derived stromal cells. PeerJ. 2016;4:e2497. Published 2016 Sep 27. doi:10.7717/peerj.2497(IF:2.183)
[24] Long H, Ma K, Xiao Z, Ren X, Yang G. Preparation and characteristics of gelatin sponges crosslinked by microbial transglutaminase. PeerJ. 2017;5:e3665. Published 2017 Aug 9. doi:10.7717/peerj.3665(IF:2.177)

检测原理
 

阿尔玛蓝(Alamar Blue)是一种氧化还原指示剂,能根据代谢活性产生吸亮度变化和荧光信号。这是一种安全无毒的染料,可用于细胞活性和细胞增殖的定量分析以及细胞因子生物测定和体外细胞毒性研究,能有效测定动物、真菌和细菌细胞的天然代谢活性。Alamar Blue在氧化状态下呈现紫蓝色无荧光性,而在还原状态下,转变为呈粉红或红色荧光的还原产物,反映所研究的细胞或微生物对氧分子的消耗,因而常被用作氧化还原指示剂,以显示被观察细胞和细菌的代谢活动。这种测定是基于具有代谢活性的细胞将试剂转换成荧光和比色指示剂的能力。在细胞增殖过程中,细胞内NADPH/NADP、FADH/FAD、FMNH/FMN和NADH/NAD的比值升高,处于还原环境。摄入细胞内的染料被这些代谢中间体及细胞色素类还原后释放到细胞外并溶于培养基中,使培养基从无荧光的靛青蓝变成有荧光的粉红色。受损和无活性细胞具有较低的天然代谢活性,因此对应的信号较低。可以用普通分光光度计或荧光光度计检测,其激发光波长在530-560 nm之间,发射光波长为590 nm。吸光度和荧光强度与活性细胞数成正比。

本品可广泛地用于细胞增殖代谢,药物的细胞毒作用的体外测定以及病原微生物的的快速检测与鉴定。 与台盼兰、TTC、MTT、MTS等分析法相比,Alamar Blue具有更多的优势。Alamar Blue采用单一试剂,可以连续、快速地检测细胞的增生状态。由于Alamar Blue对细胞无毒、无害,不影响细胞的抗体合成与分泌等活性,因此可以对同一批细胞的增生状态进行连续观察和进一步的实验观察,因此有操作简便和几乎不干扰细胞正常代谢的特点。 

运输与保存方法
 

冰袋(wet ice)运输。产品4ºC避光保存,至少一年有效。

注意事项
 

1.需客户自行准备100%还原型Alamar Blue试剂。为得到还原型Alamar Blue,需配制Alamar Blue与细胞培养基的混合溶液,Alamar Blue与细胞培养基的比值为1:10,高压灭菌15 min。(不能对浓缩的Alamar Blue高压灭菌,也不能用PBS配制溶液,因为100%还原型Alamar Blue在PBS中不稳定。)

2.为得到最好的结果,建议实验前先摸索孵育时间和接种细胞数量。

3.合适密度的细胞可以增加检测灵敏度。对于96 孔板,我们建议每孔接种100 微升细胞,细胞浓度范围为:贴壁细胞在100-10,000/孔,悬浮细胞在2,000-50,000/孔,并以培养基为空白对照。对于384 孔板,细胞浓度和接种量均减半。

4.整个过程均应为无菌操作,因为微生物污染物同样可以还原检测试剂而影响实验结果。

5.注意接种细胞浓度和加入检测试剂后孵育时间。细胞浓度过高或孵育时间过长,会导致继发性还原反应,产生无色和荧光消失。

6.孵育时,须避光。

7.本产品可以使用荧光或分光光度计检测,但荧光的灵敏度高,实验误差小,推荐使用荧光检测。
8.本产品仅作科研用途!

 

操作说明
 

一、制作标准曲线(测定最佳孵育时间和细胞数量)

1. 每孔加入100微升细胞悬液(对数生长期细胞),对细胞计数。按比例依次用培养基等比稀释成一个细胞浓度梯度,一般要做3-5个细胞浓度梯度,每个浓度建议3-6个复孔。注:设置阴性对照:细胞培养基中不加入细胞;阳性对照:100微升100%还原型Alamar Blue(不含细胞)。

2. 每孔加入10微升Alamar Blue。阳性对照孔中加入10微升无菌的超纯水。

3. 放入细胞培养箱内培养(37℃,5% CO2)一定时间。培养基的颜色由靛青蓝开始变成粉红色就可以进入下一步。

4. 推荐用荧光分光光度计检测,激发光波长在530-560 nm之间,发射光波长为590 nm。

5. 普通分光光度计在570 nm测定吸光度,参考波长600nm。也可用570/630 nm和540/600 nm替代。

6. 绘制标准曲线。以细胞数量或孵育时间为横坐标(X轴),Alamar Blue还原率为纵坐标(Y轴)。根据此标准曲线可以测定出适合的细胞数量或孵育时间(使用此标准曲线的前提是实验的条件要一致)。

二、细胞毒性和细胞增殖检测

1. 每孔加入100微升细胞悬液(对数生长期细胞),对细胞计数。建议细胞数量为104/mL,具体每孔需要的细胞数量,需根据细胞类型决定。

2. 细胞中加入待检测药物,为检测药物对细胞增殖的作用,请设置合适的对照组,包括刺激细胞和非刺激细胞。

3. 混匀,放入细胞培养箱内孵育(37℃,5% CO2)一段时间。

4. 每孔加入10微升Alamar Blue。阳性对照孔中加入10微升无菌的超纯水。

5. 放入细胞培养箱内孵育(37℃,5% CO2)4-8 h,最佳孵育时间取决于细胞类型。培养基的颜色由靛青蓝开始变成粉红色就可以进入下一步。

6. 推荐用荧光分光光度计检测,激发光波长在530-560 nm之间,发射光波长为590 nm。

7. 普通分光光度计在570nm测定吸光度,参考波长600 nm。也可用570/630 nm和540/600 nm替代。

活力计算         
                                

1.普通分光光度计检测

Alamar Blue还原率(%)=[(E600×A570)-(E570×A600)]/[(E570′×C600)-E600′×C570] ×100

E570=氧化型Alamar Blue在570 nm波长的消光系数=80586;

E600=氧化型Alamar Blue在600 nm波长的消光系数=117216;

A570=检测孔在570 nm波长的吸亮度;

A600=检测孔在600 nm波长的吸亮度;

E570′=还原型Alamar Blue在570 nm波长的消光系数=155677;

E600′=还原型Alamar Blue在600 nm波长的消光系数=14652;

C570=阴性对照孔在570 nm波长的吸亮度(培养基,Alamar Blue,无细胞);

C600=阴性对照孔在600 nm波长的吸亮度(培养基,Alamar Blue,无细胞);

 

如果使用570/630 nm和540/600 nm作为替代,则:

E540=氧化型Alamar Blue在540 nm波长的消光系数=47619;

E630=氧化型Alamar Blue在630 nm波长的消光系数=34798;

E540′=还原型Alamar Blue在540 nm波长的消光系数=104395;

E630′=还原型Alamar Blue在630 nm波长的消光系数=5494;

2.荧光分光光度计检测

Alamar Blue还原率(%)= (实验组F590-阴性对照组F590)/(100%还原型阳性对照F590-阴性对照组F590)×100

F590=590 nm波长荧光值

 

HB210524

Q:还原率的计算其中一步是还原型阳性对照荧光值减去阴性对照的荧光值,减去后成负值?

A:阳性对照的值比实验组高,需要重新制备。阳性对照是 100%还原的,高温使得阿尔玛蓝变成还原态的。

[1] Yin H, Zhou M, Chen X, et al. Fructose-coated Ångstrom silver prevents sepsis by killing bacteria and attenuating bacterial toxin-induced injuries. Theranostics. 2021;11(17):8152-8171. Published 2021 Jul 13. doi:10.7150/thno.55334(IF:11.556)
[2] Wang Q, Li J, Zhu J, et al. Genome-wide CRISPR/Cas9 screening for therapeutic targets in NSCLC carrying wild-type TP53 and receptor tyrosine kinase genes. Clin Transl Med. 2022;12(6):e882. doi:10.1002/ctm2.882(IF:11.492)
[3] Xiao Y, Li S, Pang Z, et al. Multi-reagents dispensing centrifugal microfluidics for point-of-care testing. Biosens Bioelectron. 2022;206:114130. doi:10.1016/j.bios.2022.114130(IF:10.618)
[4] Chen J, Zhou D, Nie Z, et al. A scalable coaxial bioprinting technology for mesenchymal stem cell microfiber fabrication and high extracellular vesicle yield. Biofabrication. 2021;14(1):10.1088/1758-5090/ac3b90. Published 2021 Dec 3. doi:10.1088/1758-5090/ac3b90(IF:10.020)
[5] Yang P, Zhang S, Zhang N, et al. Tailoring Synthetic Melanin Nanoparticles for Enhanced Photothermal Therapy. ACS Appl Mater Interfaces. 2019;11(45):42671-42679. doi:10.1021/acsami.9b16861(IF:8.456)
[6] Lu T, Li M, Zhao M, et al. Metformin inhibits human non-small cell lung cancer by regulating AMPK-CEBPB-PDL1 signaling pathway. Cancer Immunol Immunother. 2022;71(7):1733-1746. doi:10.1007/s00262-021-03116-x(IF:6.968)
[7] Zhang H, Zhou Y, Zhang W, et al. Construction of vascularized tissue-engineered bone with a double-cell sheet complex. Acta Biomater. 2018;77:212-227. doi:10.1016/j.actbio.2018.07.024(IF:6.383)
[8] Chen C, Zhu S, Zhang X, et al. Targeting the Synthetic Vulnerability of PTEN-Deficient Glioblastoma Cells with MCL1 Inhibitors. Mol Cancer Ther. 2020;19(10):2001-2011. doi:10.1158/1535-7163.MCT-20-0099(IF:5.615)
[9] Sun N, Yin S, Lu Y, Zhang W, Jiang X. Graphene oxide-coated porous titanium for pulp sealing: an antibacterial and dentino-inductive restorative material. J Mater Chem B. 2020;8(26):5606-5619. doi:10.1039/d0tb00697a(IF:5.344)
[10] Chen Z, Zhang Z, Chen M, Xie S, Wang T, Li X. Synergistic antitumor efficacy of hybrid micelles with mitochondrial targeting and stimuli-responsive drug release behavior. J Mater Chem B. 2019;7(9):1415-1426. doi:10.1039/c8tb02843e(IF:5.047)
[11] Chen L, Zhou D, Li X, Yang B, Xu T. Bioprinting of Human Cord Blood-Derived CD34+ Cells and Exploration of the Multilineage Differentiation Ability in Vitro. ACS Biomater Sci Eng. 2021;7(6):2592-2604. doi:10.1021/acsbiomaterials.0c01297(IF:4.749)
[12] Fu YY, Zhang L, Yang Y, et al. Synergistic antibacterial effect of ultrasound microbubbles combined with chitosan-modified polymyxin B-loaded liposomes on biofilm-producing Acinetobacter baumannii. Int J Nanomedicine. 2019;14:1805-1815. Published 2019 Mar 8. doi:10.2147/IJN.S186571(IF:4.471)
[13] Lu J, Hu X, Yuan T, et al. 3D-Printed Poly (P-Dioxanone) Stent for Endovascular Application: In Vitro Evaluations. Polymers (Basel). 2022;14(9):1755. Published 2022 Apr 26. doi:10.3390/polym14091755(IF:4.329)
[14] Guo H, Wang Z, Du Q, Li P, Wang Z, Wang A. Stimulated phase-shift acoustic nanodroplets enhance vancomycin efficacy against methicillin-resistant Staphylococcus aureus biofilms. Int J Nanomedicine. 2017;12:4679-4690. Published 2017 Jun 30. doi:10.2147/IJN.S134525(IF:4.300)
[15] Chen Z, Chen C, Zhou T, et al. A high-throughput drug combination screen identifies an anti-glioma synergism between TH588 and PI3K inhibitors. Cancer Cell Int. 2020;20:337. Published 2020 Jul 23. doi:10.1186/s12935-020-01427-0(IF:4.175)
[16] Dai W, Wu J, Wang D, Wang J. Cancer gene therapy by NF-κB-activated cancer cell-specific expression of CRISPR/Cas9 targeting telomeres. Gene Ther. 2020;27(6):266-280. doi:10.1038/s41434-020-0128-x(IF:4.128)
[17] Zhou D, Chen L, Ding J, et al. A 3D engineered scaffold for hematopoietic progenitor/stem cell co-culture in vitro. Sci Rep. 2020;10(1):11485. Published 2020 Jul 13. doi:10.1038/s41598-020-68250-5(IF:3.998)
[18] Dongdong Z, Jin Y, Yang T, et al. Antiproliferative and Immunoregulatory Effects of Azelaic Acid Against Acute Myeloid Leukemia via the Activation of Notch Signaling Pathway. Front Pharmacol. 2019;10:1396. Published 2019 Nov 29. doi:10.3389/fphar.2019.01396(IF:3.845)
[19] Lu T, Ma K, Zhan C, et al. Downregulation of long non-coding RNA LINP1 inhibits the malignant progression of esophageal squamous cell carcinoma. Ann Transl Med. 2020;8(11):675. doi:10.21037/atm-20-1009(IF:3.297)
[20] Zhuang M, Liu T, Song K, Ge D, Li X. Thermo-responsive poly(N-isopropylacrylamide)-grafted hollow fiber membranes for osteoblasts culture and non-invasive harvest. Mater Sci Eng C Mater Biol Appl. 2015;55:410-419. doi:10.1016/j.msec.2015.05.040(IF:3.088)
[21] Huang Z, Yang L, Hu X, et al. Molecular Mechanism Study on Effect of Biodegradable Amino Acid Ester-Substituted Polyphosphazenes in Stimulating Osteogenic Differentiation. Macromol Biosci. 2019;19(6):e1800464. doi:10.1002/mabi.201800464(IF:2.895)
[22] Li X, Huang W, Zheng X, et al. Synergistic in vitro effects of indocyanine green and ethylenediamine tetraacetate-mediated antimicrobial photodynamic therapy combined with antibiotics for resistant bacterial biofilms in diabetic foot infection. Photodiagnosis Photodyn Ther. 2019;25:300-308. doi:10.1016/j.pdpdt.2019.01.010(IF:2.589)
[23] Yang G, Xiao Z, Ren X, et al. Enzymatically crosslinked gelatin hydrogel promotes the proliferation of adipose tissue-derived stromal cells. PeerJ. 2016;4:e2497. Published 2016 Sep 27. doi:10.7717/peerj.2497(IF:2.183)
[24] Long H, Ma K, Xiao Z, Ren X, Yang G. Preparation and characteristics of gelatin sponges crosslinked by microbial transglutaminase. PeerJ. 2017;5:e3665. Published 2017 Aug 9. doi:10.7717/peerj.3665(IF:2.177)