血液DNA提取试剂盒|MolPure® Blood DNA Kit

血液DNA提取试剂盒|MolPure® Blood DNA Kit

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FAQ

COA

已发表文献

MolPure® Blood DNA Kit适用于哺乳动物、禽类、鸟类、两栖类等血液样品中DNA的提取。离心吸附柱中采用的硅基质材料为本公司特有新型材料,配合本公司独特的裂解液配方可以可最大限度的回收高纯度DNA。提取的DNA纯度高,质量稳定可靠,可适用于各种下游应用实验,如PCR、分子克隆和酶切反应等。

 

试剂盒组分

类别

编号

组分名称

18730ES08

(5 T)

18730ES50

(50 T)

18730ES70

(200 T)

Part I

18730-A

Proteinase K (20 mg/mL)

100 μL

1 mL

1×4 mL

Part II

18730-B

MolPure® DNA Column B2

5

50

200

18730-C

2 mL Collection Tube B2

5

50

200

18730-D

AC Buffer B2

500 μL

5 mL

20 mL

18730-E

DB Buffer B2

1 mL

10 mL

40 mL

18730-F

BD Buffer B2

1.5 mL

15 mL

60 mL

18730-G

PL Buffer B2

2.5 mL

25 mL

100 mL

18730-H

Wash Buffer*

1.5 mL

13 mL

50 mL

18730-I

Elution Buffer

1 mL

10 mL

20 mL

 

运输与保存方法

Part I组分常温运输4℃避光保存,有效期12个月。

Part II组分常温运输,常温保存,有效期12个月。

 

注意事项

1. 避免试剂长时间暴露于空气中产生挥发、氧化、pH值变化,各溶液使用后应及时盖紧盖子。
2. 注意观察各溶液是否有析出或浑浊(尤其冬季等室温为低温环境时),37℃温浴复溶至溶液澄清,避免影响使用效果。

3. 去蛋白液PL含有刺激性物质,为了您的安全和健康,请穿实验服并佩戴一次性手套操作。

4. 本产品仅作科研用途!

 

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产品名称

货号

规格

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10149ES08

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HB210824

 

Q:提取的 DNA 存在降解

A:(1)样本采集与保存降解:

1.应尽可能选择新鲜的样本;

2.样本起始投入量不要超过所用方法的起始量标准;

3.样品保存时要尽可能的避免反复冻融;

2)样本前处理不当:

1.选择合适的处理方式并进行充分的样本前处理;

2.前处理结束后在样本解冻前添加裂解液;

3)样本裂解:

1.需对样本进行充分裂解;

2.正确添加所需试剂种类及使用量,样本量增加时裂解液也需成倍增加;

4)样品保存:

对得到的 DNA 产物进行分装保存,避免反复冻融且保存时间不易太久。

Q:提取的 DNA 产量低

A:(1)样本采集与保存:

1.事先了解提取样本中 DNA 含量水平;

2.样本保存时要尽可能的避免反复冻融,保存时间不宜太久;

3.样本投入量适量,不宜过多或过少;

2)样本前处理和裂解:

选择合适的前处理及裂解方式(比如延长裂解和沉淀DNA 的时间等),避免堵柱,并尽可能的将样本中的DNA 完全释放出来

3)提取纯化:

1.使用沉淀法提取DNA 时,可以 1/10 体积的醋酸钠(pH5.2)有助于 DNA 沉淀;

2.在消化液中加入有乙醇后有沉淀析出时,用移液枪吸打几次打散沉淀有利于提高产量困难;

3.洗脱buffer 中无水乙醇添加量不准确,按照说明书正确添加无水乙醇;

4.添加洗脱液前过度干燥吸附柱:开盖时间不宜超过 5min,否则易造成 DNA 洗脱

5.洗脱液问题:请使用Elution Buffer 洗脱;若用 ddH2O 或其他洗脱液时,确认其

PH 值在 7.0-8.5 之间;

6.洗脱不充分:使用柱式试剂盒对 DNA 产物洗脱的时候,预热洗脱液并滴加在膜中央位置,尽可能的覆盖整个吸附膜,增加洗脱体积或者二次洗脱也可增加产量。

Q:提取的 DNA 纯度低,影响下游实验结果

A:样本投入量不要太多;样本应进行充分裂解:不同污染

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MolPure® Blood DNA Kit适用于哺乳动物、禽类、鸟类、两栖类等血液样品中DNA的提取。离心吸附柱中采用的硅基质材料为本公司特有新型材料,配合本公司独特的裂解液配方可以可最大限度的回收高纯度DNA。提取的DNA纯度高,质量稳定可靠,可适用于各种下游应用实验,如PCR、分子克隆和酶切反应等。

 

试剂盒组分

类别

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组分名称

18730ES08

(5 T)

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1. 避免试剂长时间暴露于空气中产生挥发、氧化、pH值变化,各溶液使用后应及时盖紧盖子。
2. 注意观察各溶液是否有析出或浑浊(尤其冬季等室温为低温环境时),37℃温浴复溶至溶液澄清,避免影响使用效果。

3. 去蛋白液PL含有刺激性物质,为了您的安全和健康,请穿实验服并佩戴一次性手套操作。

4. 本产品仅作科研用途!

 

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A:(1)样本采集与保存降解:

1.应尽可能选择新鲜的样本;

2.样本起始投入量不要超过所用方法的起始量标准;

3.样品保存时要尽可能的避免反复冻融;

2)样本前处理不当:

1.选择合适的处理方式并进行充分的样本前处理;

2.前处理结束后在样本解冻前添加裂解液;

3)样本裂解:

1.需对样本进行充分裂解;

2.正确添加所需试剂种类及使用量,样本量增加时裂解液也需成倍增加;

4)样品保存:

对得到的 DNA 产物进行分装保存,避免反复冻融且保存时间不易太久。

Q:提取的 DNA 产量低

A:(1)样本采集与保存:

1.事先了解提取样本中 DNA 含量水平;

2.样本保存时要尽可能的避免反复冻融,保存时间不宜太久;

3.样本投入量适量,不宜过多或过少;

2)样本前处理和裂解:

选择合适的前处理及裂解方式(比如延长裂解和沉淀DNA 的时间等),避免堵柱,并尽可能的将样本中的DNA 完全释放出来

3)提取纯化:

1.使用沉淀法提取DNA 时,可以 1/10 体积的醋酸钠(pH5.2)有助于 DNA 沉淀;

2.在消化液中加入有乙醇后有沉淀析出时,用移液枪吸打几次打散沉淀有利于提高产量困难;

3.洗脱buffer 中无水乙醇添加量不准确,按照说明书正确添加无水乙醇;

4.添加洗脱液前过度干燥吸附柱:开盖时间不宜超过 5min,否则易造成 DNA 洗脱

5.洗脱液问题:请使用Elution Buffer 洗脱;若用 ddH2O 或其他洗脱液时,确认其

PH 值在 7.0-8.5 之间;

6.洗脱不充分:使用柱式试剂盒对 DNA 产物洗脱的时候,预热洗脱液并滴加在膜中央位置,尽可能的覆盖整个吸附膜,增加洗脱体积或者二次洗脱也可增加产量。

Q:提取的 DNA 纯度低,影响下游实验结果

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