Hieff® Fast Cell Direct RT set (for probe)
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COA
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Hieff® Fast Cell Direct Probe RT-qPCR Kit 适用于对各种动物细胞进行基因定量表达分析（如cell line 化的贴壁细胞和悬浮细胞、原代培养细胞、各种干细胞、iPS 细胞等），无需提RNA，可直接进行qPCR表达分析，用时短，操作简单，出错率低，最短只需1.5 h就可高效完成从模板制备到反转录反应及基因表达分析等步骤。该产品为探针法细胞直扩RT-qPCR试剂盒的反转录模块，为补充试剂。
组分信息
|
组分编号 |
组分名称 |
16815ES40 |
16815ES60 |
|
16815-A |
4× Hifair® FCD RT Mix |
200 μL |
500 μL |
|
16815-B |
RNase Free H2O |
2 mL |
5 mL |
储存条件
长期保存时请于-25~-15℃保存，有效期1年。
使用说明
一、裂解产物的制备
- 将试剂放置室温下融化，使用前上下颠倒，轻轻混匀，并轻微离心后使用，避免起泡。没有混匀试剂、使用振荡器混匀、未在冰上配置试剂等会导致反应性能下降。
- 将细胞转移至离心管中*，5000 rpm离心2 min收集细胞**，充分吸除培养基。若细胞在96孔板中培养，可直接吸除培养基。
- 各个孔内加入FCD Washing Buffer 150 μL，吸打清洗细胞，5000 rpm离心2 min，吸尽FCD Washing Buffer。
- 各孔中加入48 μL FCD Lysis Buffer溶液，2 μL DNase I溶液，室温吸打混匀后静置5 min，孵育后加入2.5 μL FCD Stop Solution***, 吸打混匀5次左右，即可得到裂解产物****，细胞数量超过1× 105 cells时可能会有裂解残留物属正常现象。
*50 μL裂解体系适配细胞数的基本要求是每孔1× 102 – 1× 105 cells，若细胞数量较多，可适当等比例增加FCD Lysis Buffer溶液和DNase Ⅰ溶液的用量。
**不同细胞的离心条件不同，请使用适合于所用细胞的离心速度进行离心。
***50 μL的裂解液需加入2.5 μL的FCD Stop Solution。依实验需要，加入裂解液量增大时需相应增大FCD Stop Solution的量。
****细胞裂解产物溶液长期保存时，请置于-25~-15℃。
二、反转录
- 室温融化4× Hifair® FCD RT Mix后轻微颠倒混匀，置于冰上并按下表配置反应体系：
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组分 |
体积 （μL） |
终浓度 |
|
4× Hifair® FCD RT Mix |
5 |
1× |
|
裂解产物* |
x |
– |
|
RNase-free H2O |
Up to 20 |
– |
表1 反转录反应体系
*避免吸入细胞碎片，推荐使用量为2 μl，最大不超过反应体系的55%。
- 移液器轻轻混匀上述配制的反应液，按下表程序进行反转录反应**：
|
反应温度 |
反应时间 |
|
37℃ |
5 min |
|
85℃ |
5 sec |
表2 反转录反应程序
**反转录温度推荐使用37℃，反转录产物可直接进行下游qRT-PCR检测。为避免反转录体系对qPCR反应的抑制，得到合适的Ct值（10-35），可将产物稀释10-1000倍后使用。若短时间内不进行下游实验，可放置于-25~-15℃保存。
三、荧光定量PCR
- 体系配置
使用下列组份比例配制反应液（配制过程请于冰上进行）：
|
组分 |
体积（μL） |
终浓度 |
|
2× Hieff® FCD Probe qPCR Mix |
12.5 |
1× |
|
Forward Primer (10 μM) |
0.5 |
200 nM |
|
Reverse Primer (10 μM) |
0.5 |
200 nM |
|
Probe (10 μM) |
0.25-1 |
100-400 nM |
|
反转录产物* |
x |
– |
|
RNase-free H2O |
Up to 25 |
– |
表3 qPCR反应体系
*高浓度模板易导致非特异扩增，可适当将模板稀释5-50倍。模板推荐用量4 μL。反应性能较差时，可以在0.2-1.0 μM范围内调整引物探针浓度。
- 荧光定量PCR快速扩增程序（推荐）
本产品推荐使用快速程序扩增，可大大减少反应时间。使用Tm值较低的引物难以扩增时，可额外调整退火温度。
|
循环步骤 |
温度 |
时间 |
循环数 |
|
预变性 |
95℃ |
10 sec |
1 |
|
变性 |
95℃ |
|
45 |
|
退火/延伸** |
60℃ |
10 sec |
表4 qPCR反应程序（快速）
**退火/延伸温度、终延伸时间可根据实验要求适当调整。 快速程序适用于绝大多数基因，个别复杂二级结构基因可尝试常规程序。
- 荧光定量PCR常规扩增程序
实验仪器不满足快速反应时间时，也可使用常规程序进行扩增。
|
循环步骤 |
温度 |
时间 |
循环数 |
|
预变性 |
95℃ |
10 sec |
1 |
|
变性 |
95℃ |
|
40-45 |
|
退火/延伸** |
60℃ |
30 sec |
表5 qPCR反应程序（常规）
注意事项
- 使用前，将冻存的各组分充分融解并轻轻混匀后使用。
- 实验时，请尽量使用无污染的耗材，避免污染。
- 本产品避免反复冻融，配制时应避免强光照射。
- 为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。
- 本产品仅作科研用途！
Ver.CN20231207
Hieff® Fast Cell Direct Probe RT-qPCR Kit 适用于对各种动物细胞进行基因定量表达分析（如cell line 化的贴壁细胞和悬浮细胞、原代培养细胞、各种干细胞、iPS 细胞等），无需提RNA，可直接进行qPCR表达分析，用时短，操作简单，出错率低，最短只需1.5 h就可高效完成从模板制备到反转录反应及基因表达分析等步骤。该产品为探针法细胞直扩RT-qPCR试剂盒的反转录模块，为补充试剂。
组分信息
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组分编号 |
组分名称 |
16815ES40 |
16815ES60 |
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16815-A |
4× Hifair® FCD RT Mix |
200 μL |
500 μL |
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16815-B |
RNase Free H2O |
2 mL |
5 mL |
储存条件
长期保存时请于-25~-15℃保存，有效期1年。
使用说明
一、裂解产物的制备
- 将试剂放置室温下融化，使用前上下颠倒，轻轻混匀，并轻微离心后使用，避免起泡。没有混匀试剂、使用振荡器混匀、未在冰上配置试剂等会导致反应性能下降。
- 将细胞转移至离心管中*，5000 rpm离心2 min收集细胞**，充分吸除培养基。若细胞在96孔板中培养，可直接吸除培养基。
- 各个孔内加入FCD Washing Buffer 150 μL，吸打清洗细胞，5000 rpm离心2 min，吸尽FCD Washing Buffer。
- 各孔中加入48 μL FCD Lysis Buffer溶液，2 μL DNase I溶液，室温吸打混匀后静置5 min，孵育后加入2.5 μL FCD Stop Solution***, 吸打混匀5次左右，即可得到裂解产物****，细胞数量超过1× 105 cells时可能会有裂解残留物属正常现象。
*50 μL裂解体系适配细胞数的基本要求是每孔1× 102 – 1× 105 cells，若细胞数量较多，可适当等比例增加FCD Lysis Buffer溶液和DNase Ⅰ溶液的用量。
**不同细胞的离心条件不同，请使用适合于所用细胞的离心速度进行离心。
***50 μL的裂解液需加入2.5 μL的FCD Stop Solution。依实验需要，加入裂解液量增大时需相应增大FCD Stop Solution的量。
****细胞裂解产物溶液长期保存时，请置于-25~-15℃。
二、反转录
- 室温融化4× Hifair® FCD RT Mix后轻微颠倒混匀，置于冰上并按下表配置反应体系：
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组分 |
体积 （μL） |
终浓度 |
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4× Hifair® FCD RT Mix |
5 |
1× |
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裂解产物* |
x |
– |
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RNase-free H2O |
Up to 20 |
– |
表1 反转录反应体系
*避免吸入细胞碎片，推荐使用量为2 μl，最大不超过反应体系的55%。
- 移液器轻轻混匀上述配制的反应液，按下表程序进行反转录反应**：
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反应温度 |
反应时间 |
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37℃ |
5 min |
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85℃ |
5 sec |
表2 反转录反应程序
**反转录温度推荐使用37℃，反转录产物可直接进行下游qRT-PCR检测。为避免反转录体系对qPCR反应的抑制，得到合适的Ct值（10-35），可将产物稀释10-1000倍后使用。若短时间内不进行下游实验，可放置于-25~-15℃保存。
三、荧光定量PCR
- 体系配置
使用下列组份比例配制反应液（配制过程请于冰上进行）：
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组分 |
体积（μL） |
终浓度 |
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2× Hieff® FCD Probe qPCR Mix |
12.5 |
1× |
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Forward Primer (10 μM) |
0.5 |
200 nM |
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Reverse Primer (10 μM) |
0.5 |
200 nM |
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Probe (10 μM) |
0.25-1 |
100-400 nM |
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反转录产物* |
x |
– |
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RNase-free H2O |
Up to 25 |
– |
表3 qPCR反应体系
*高浓度模板易导致非特异扩增，可适当将模板稀释5-50倍。模板推荐用量4 μL。反应性能较差时，可以在0.2-1.0 μM范围内调整引物探针浓度。
- 荧光定量PCR快速扩增程序（推荐）
本产品推荐使用快速程序扩增，可大大减少反应时间。使用Tm值较低的引物难以扩增时，可额外调整退火温度。
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循环步骤 |
温度 |
时间 |
循环数 |
|
预变性 |
95℃ |
10 sec |
1 |
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变性 |
95℃ |
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45 |
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退火/延伸** |
60℃ |
10 sec |
表4 qPCR反应程序（快速）
**退火/延伸温度、终延伸时间可根据实验要求适当调整。 快速程序适用于绝大多数基因，个别复杂二级结构基因可尝试常规程序。
- 荧光定量PCR常规扩增程序
实验仪器不满足快速反应时间时，也可使用常规程序进行扩增。
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循环步骤 |
温度 |
时间 |
循环数 |
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预变性 |
95℃ |
10 sec |
1 |
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变性 |
95℃ |
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40-45 |
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退火/延伸** |
60℃ |
30 sec |
表5 qPCR反应程序（常规）
注意事项
- 使用前，将冻存的各组分充分融解并轻轻混匀后使用。
- 实验时，请尽量使用无污染的耗材，避免污染。
- 本产品避免反复冻融，配制时应避免强光照射。
- 为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。
- 本产品仅作科研用途！
Ver.CN20231207
暂无内容
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