乳液外泌体快速提取分离试剂盒|Quick exosome isolation kit(for Milk)
产品说明书
FAQ
COA
已发表文献
Exosome(外泌体)是由活细胞分泌的直径约为30-150 nm的小囊泡,具有典型的脂质双分子层结构;存在于细胞培养上清液、血清、血浆、唾液、尿液、羊水以及其它生物体液中;Exosome携带有多种蛋白质、脂类、DNA和RNA等重要信息,不仅在细胞与细胞间的物质和信息传递中起重要作用,更有望成为多种疾病的早期诊断标志物。
本试剂盒采用独特的分离技术,可以快速从乳液中获得大量完整的外泌体颗粒,适用于下游的细胞共培养、电镜分析、Western Blot、荧光定量(qPCR)和高通量测序等应用。
产品组分
编号 |
组分 |
产品编号/规格 |
|
41209JP04 |
41209JP20 |
||
41209-A |
Buffer-A |
10 mL |
50 mL |
41209-B |
Buffer-B |
10 mL |
50 mL |
41209-C |
Buffer-C |
10 mL |
50 mL |
41209-D |
Buffer-D |
20 mL |
100 mL |
41209-E |
50 mL过滤柱 |
4个 |
20个 |
运输和保存方法
室温运输,本试剂盒可于室温稳定保存24个月。
注意事项
1、产品只针对乳液样本,不适用其它血清/血液或者是细胞培养上清中外泌体的抽提;如果需要进行细胞上清外泌体分离,请选用细胞培养上清外泌体快速抽提试剂盒。
2、如果想要进一步纯化外泌体,可以使用相应抗体包被的磁珠进行亲和纯化。
3、为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。
4、本产品仅作科研用途!
操作方法
样品预处理:
1、收集新鲜的样品,置于冰上待用;若为冻存的样品,可于冰箱取出后放于25℃水浴中解冻,待完全融化后置于冰上待用。
2、取25 mL(单次样品最佳提取量为50 mL)乳液样品转移至离心管中,4℃,10000×g离心20 min,转移分层样品中的中层乳清至新的离心管中。(离心后样品分为三层,上层为脂质层,中层为乳清层,下层为蛋白层。脂质层应致密、稳定,若脂质层松软,不稳定,且蛋白层沉淀较多,可重复此步骤。)
3,向乳清中加入Buffer-A,颠倒混匀离心管至呈现半透明状,再加入Buffer-B,颠倒混匀后2℃至8℃静置10min。(静置结束后摇晃离心管,样品应呈现白色固体和透明液体混合物,若样品仍为乳白色或是未呈现混合状,可以适当加入Buffer-A至液体透明。)
乳清体积 |
Buffer-A |
Buffer-B |
20 mL |
2 mL |
1.5 mL |
40 mL |
4 mL |
3 mL |
【注】:试剂用量可根据此表进行等比例换算。
4,将样品于4℃,10000×g离心10 min,收集上清液转移至50 mL过滤柱中,4℃,3000×g离心2min。
5,收集过滤后的上清液至新的离心管中,加入和Buffer-B等量的Buffer-C颠倒混匀。
外泌体分离:
1、向预处理后的样品中,按照下表加入Exosome isolation solution (其他样品量根据表中试剂用量进行等比例变换)。
预处理样品量 |
Buffer-D |
20 mL |
5 mL |
40 mL |
10 mL |
【注】:试剂用量可根据此表进行等比例换算。
2、盖紧离心管盖,涡旋振荡1 min,放置于4℃冰箱静置2 h。
3、取出装有混合液的离心管,4℃,10,000×g离心60 min,弃上清(尽可能吸净上清液),收集富含外泌体的沉淀。
4、吸取一定量体积的1×PBS溶液均匀吹打离心沉淀物,待其充分悬浮于PBS后,将悬液转移至新的1.5 mL离心管中。
【注】加入1×PBS的量,建议根据预处理样本的体积决定,预处理样本体积:Exosome Buffer体积=40:1。
5、将含有重悬液的1.5 mL离心管于4℃,12,000×g离心5 min,弃沉淀,保留上清液,该上清液即富含外泌体颗粒的溶液。
【注】此时如果依然可以看到明显的沉淀,建议重复步骤5,多次离心至无明显沉淀。
6)外泌体的保存:纯化后的外泌体可于4℃保存3天,分装后于-80℃ 长期保存,避免反复冻融。
外泌体除菌(可选):
获得的外泌体后期需要与细胞共培养,可以使用0.22 μm的滤器进行过滤除菌。初次尝试时,外泌体浓度在10-100 μg/mL内做梯度摸索,选择一个较为合适的条件。
HB220107
Exosome(外泌体)是由活细胞分泌的直径约为30-150 nm的小囊泡,具有典型的脂质双分子层结构;存在于细胞培养上清液、血清、血浆、唾液、尿液、羊水以及其它生物体液中;Exosome携带有多种蛋白质、脂类、DNA和RNA等重要信息,不仅在细胞与细胞间的物质和信息传递中起重要作用,更有望成为多种疾病的早期诊断标志物。
本试剂盒采用独特的分离技术,可以快速从乳液中获得大量完整的外泌体颗粒,适用于下游的细胞共培养、电镜分析、Western Blot、荧光定量(qPCR)和高通量测序等应用。
产品组分
编号 |
组分 |
产品编号/规格 |
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41209JP04 |
41209JP20 |
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41209-A |
Buffer-A |
10 mL |
50 mL |
41209-B |
Buffer-B |
10 mL |
50 mL |
41209-C |
Buffer-C |
10 mL |
50 mL |
41209-D |
Buffer-D |
20 mL |
100 mL |
41209-E |
50 mL过滤柱 |
4个 |
20个 |
运输和保存方法
室温运输,本试剂盒可于室温稳定保存24个月。
注意事项
1、产品只针对乳液样本,不适用其它血清/血液或者是细胞培养上清中外泌体的抽提;如果需要进行细胞上清外泌体分离,请选用细胞培养上清外泌体快速抽提试剂盒。
2、如果想要进一步纯化外泌体,可以使用相应抗体包被的磁珠进行亲和纯化。
3、为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。
4、本产品仅作科研用途!
操作方法
样品预处理:
1、收集新鲜的样品,置于冰上待用;若为冻存的样品,可于冰箱取出后放于25℃水浴中解冻,待完全融化后置于冰上待用。
2、取25 mL(单次样品最佳提取量为50 mL)乳液样品转移至离心管中,4℃,10000×g离心20 min,转移分层样品中的中层乳清至新的离心管中。(离心后样品分为三层,上层为脂质层,中层为乳清层,下层为蛋白层。脂质层应致密、稳定,若脂质层松软,不稳定,且蛋白层沉淀较多,可重复此步骤。)
3,向乳清中加入Buffer-A,颠倒混匀离心管至呈现半透明状,再加入Buffer-B,颠倒混匀后2℃至8℃静置10min。(静置结束后摇晃离心管,样品应呈现白色固体和透明液体混合物,若样品仍为乳白色或是未呈现混合状,可以适当加入Buffer-A至液体透明。)
乳清体积 |
Buffer-A |
Buffer-B |
20 mL |
2 mL |
1.5 mL |
40 mL |
4 mL |
3 mL |
【注】:试剂用量可根据此表进行等比例换算。
4,将样品于4℃,10000×g离心10 min,收集上清液转移至50 mL过滤柱中,4℃,3000×g离心2min。
5,收集过滤后的上清液至新的离心管中,加入和Buffer-B等量的Buffer-C颠倒混匀。
外泌体分离:
1、向预处理后的样品中,按照下表加入Exosome isolation solution (其他样品量根据表中试剂用量进行等比例变换)。
预处理样品量 |
Buffer-D |
20 mL |
5 mL |
40 mL |
10 mL |
【注】:试剂用量可根据此表进行等比例换算。
2、盖紧离心管盖,涡旋振荡1 min,放置于4℃冰箱静置2 h。
3、取出装有混合液的离心管,4℃,10,000×g离心60 min,弃上清(尽可能吸净上清液),收集富含外泌体的沉淀。
4、吸取一定量体积的1×PBS溶液均匀吹打离心沉淀物,待其充分悬浮于PBS后,将悬液转移至新的1.5 mL离心管中。
【注】加入1×PBS的量,建议根据预处理样本的体积决定,预处理样本体积:Exosome Buffer体积=40:1。
5、将含有重悬液的1.5 mL离心管于4℃,12,000×g离心5 min,弃沉淀,保留上清液,该上清液即富含外泌体颗粒的溶液。
【注】此时如果依然可以看到明显的沉淀,建议重复步骤5,多次离心至无明显沉淀。
6)外泌体的保存:纯化后的外泌体可于4℃保存3天,分装后于-80℃ 长期保存,避免反复冻融。
外泌体除菌(可选):
获得的外泌体后期需要与细胞共培养,可以使用0.22 μm的滤器进行过滤除菌。初次尝试时,外泌体浓度在10-100 μg/mL内做梯度摸索,选择一个较为合适的条件。
HB220107
Q:50ml过滤株是多大孔径的?
A:0.45um的孔径。
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